主题:【已应助】在制备面筋蛋白的过程中被氧化了?

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wuruiqiqi
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我要测定面团当中的自由巯基含量。用的Ellman方法(蛋白质提取后加入DTNB显色反应,测412nm吸光度)。
这是我的操作。
按照国标方法清洗面筋,然后冷冻干燥,磨粉过筛后制备得到面筋蛋白粉末。
用10ml  8M尿素-Tris/Hcl溶液 溶解0.1g面筋,磁力搅拌1h。
10000g离心10min,取上清液1 ml 加入4ml 8M尿素-Tris/Hcl,100ul 4mg/ml DTNB.
然后就没有颜色反应。
面筋蛋白溶液加巯基乙醇和盐酸胍处理之后,用三氯乙酸沉淀蛋白,结果盐酸胍晶体析出,导致后来不加盐酸胍了(这个问题又是闹哪样!)。沉淀后的蛋白质用8M尿素溶解加DTNB有颜色反应,说明方法没问题,二硫键也存在的好好地。
问题出在哪里呢?我用半胱氨酸溶液和DTNB反应,有颜色反应,说明DTNB没问题。自由巯基容易被氧化,是在制备面筋蛋白的过程中被氧化了?还是有其他什么原因呢。我看很多中文文章都测过,很容易的样子,可是我一直没搞定。
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whrboy
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tris/Hcl (1L里溶解20.4gtris,6.9gglycine,1.2gEDTA) pH 8.0,ellman以及其他试剂都用的这个tris/Hcl 配置的。
显色液我用的8M尿素溶液(溶解在tris/hcl ,没有SDS)。
显色5min。(发现没颜色,一直放着,也都没颜色)
没有水浴,室温放置的。
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