主题：【转帖】二恶英及其类似物Ⅲ食品测定方法

1.3净化　净化目的是除去共提取物中的干扰组分，净化程度取决于被测组分的数目、基质干扰及GC-MS状态。目前大多采用色谱法进行净化，包括吸附、分配与排阻色谱。一系列色谱柱，如硅胶加化学改性吸附剂（用硫酸、KOH、CsOH处理的硅藻土及硅胶）、Florisil、氧化铝、活性碳等，常被串联使用，多层色谱联用柱也日益普及。〔17〕
根据样品类型选择适当的净化方法，存在大量共提取物时需要进行预处理。包括酸或碱洗，如用硫酸处理消除油脂等干扰组分；硅胶柱可吸附脂质及油脂成分，用硫酸、氢氧化钠和硝酸银浸泡处理的多层硅胶柱进行洗脱；凝胶渗透色谱也被用来去除脂肪和其它分子量相对较高的化合物。〔4，5〕
微型氧化铝柱（用一次性玻璃滴管装柱）可除去提取液中弱极性的氯代苯、多氯联苯与联三苯和多氯代二苯醚，这些物质被二氯甲烷+正己烷（1+50）首先洗脱出来，留置柱上的PCDD/Fs再用二氯甲烷+正己烷（1+1）洗脱。这种处理还可除去多氯代-2-苯氧基酚（二恶英的一种前体），以避免其在GC柱上因加热闭环形成PCDDs的干扰。〔4〕
80年代中期以来广泛使用双柱法，提取液首先经活性炭吸附，用二氯甲烷洗脱，将平面化合物（包括PCDD/Fs）与非平面化合物分离。〔17〕用甲苯对活性炭柱反相洗脱平面化合物，再用氧化铝柱将PCDD/Fs与其它平面化合物分离(如：非邻位取代的PCBs、多氯代萘)。此法对复杂生物样品的分析十分适用，已有自动化仪器商业供应〔4，18〕。近年来也有采用HPLC分离PCDD/Fs的报道，主要用于2,3,7,8-TCDD的定量分析，也用于处理难以净化样品分析其它PCDD/Fs。〔13〕
提取、净化方法的优劣，应以验证其有效性来确定。通过测定加标样品及基质空白，可获得检测浓度下的回收率。PCDD/Fs分析时至少需要三套标准：一套为17种12C-PCDD/Fs；一套为15种13C-PCDD/Fs的定量内标和2个13C标记的用于确定色谱保留时间的内标；另一套为考察净化效率的37Cl-2,3,7,8-TCDD标准。
1.4分离　净化手段尽管复杂，最终的提取液仍存在氯代化合物的干扰。这就需要良好分离技术。化学键合固定相的HRGC是有效分离PCDD/Fs的唯一选择。〔13，19〕常用WCOT毛细管柱，长度为15～60m，内径0.22～0.35mm，内膜厚度为0.15～0.25μm。非极性或弱极性固定相(烷基/芳基硅烷，如OV1、SE30、SE52、SE54、PS255、DB-1、DB-5、OV17-01等)可有效地将PCDD/Fs分离为氯原子取代数相同的化合物的组(如:所有TCDDs和TCDFs及所有PeCDDs和PeCDFs等分离)，而极性固定相(氰基硅烷，如silar10c、SP2330、SP2340、CP SIL88等)可将一组中的异构体进行分离。迄今为止，尚未见仅用一根色谱柱即可分离所有同系物异构体的报道。使用欧共体规定使用的非极性色谱柱（如DB-5）分析仅有2,3,7,8-取代的PCDD/Fs，同时使用非极性色谱柱和极性色谱柱（如SP 2331和CPSIL 88）可分离其它位置上氯取代的PCDD/Fs。〔6〕食品中所要测定的是17种2,3,7,8取代的PCDD/Fs，仅采用非极性的色谱柱基本可以满足要求。〔5〕
　色谱柱的柱长、内径及涂膜厚度决定了操作条件（温度和载气流速）及被分析物的保留时间。通过对要定量的17种2,3,7,8取代的PCDD/Fs同系物异构体（13C标记与未标记）标准品比较获得保留时间。为能准确鉴定被分析组分，校准标准的使用极为必要。应单独测试每个HRGC系统中同系物异构体的色谱出峰次序（文献仅作为参考），因此在仪器分析前需要测试柱效的PCDD/Fs标准进行证实，也可使用含已知同系物异构体成分的样品提取液（如飞灰）。
1.5定量　要尽量减少化学噪声和改善检出限，以保证PCDD/Fs这一类复杂化合物的痕量分析。采用选择离子监测(SIM)的质谱法，以13C稳定同位素为内标，校正标准测定各个同系物异构体的响应因子和线性范围。〔5～13〕定量检测主要采用SIM技术监测氯同位素2个分子离子（M+，M++2）或其它丰度较高离子，同时监测相应的13C稳定性同位素内标氯同位素的两个分子离子，通过不同窗口对氯不同取代程度的异构体分别定量。这可减少共提取物和其它污染物的干扰，提高检测选择性和灵敏度。所使用仪器包括四极杆低分辨质谱仪（LRMS）、双聚焦磁式扇形高分辨质谱仪（HRMS）和质谱－质谱串联（MS-MS）。HRMS通过监测精确质量提供了最高的选择性，因此HRMS是PCDD/Fs测定的首选仪器。电子轰击源为PCDD/Fs分析的常用电离方式(EI)。阴离子化学电离(NCI)对高氯取代化合物有更高的灵敏度，但不适合低氯取代的化合物，如2,3,7,8-TCDD的分析。〔5，6〕

MS方法的灵敏度不是由标准溶液的信噪比提供，而是由样品基质条件下的信噪比决定。LRMS在理论上可以达到检测要求的灵敏度，但由于复杂基质和共存的PCBs及其它氯代化合物的干扰，食品中PCDD/Fs低于pg/g水平的分析的灵敏度和其它技术指标都难以达到分析要求。〔4，6，19，20〕为了得到分析食物中TCDDs的准确结果，分辨率在10000以上的HRMS成为唯一选择。因为TCDD的M+离子m/z为319.8963，而干扰物二氯二苯基二氯乙烯的M++4离子为319.9321，需要分辨率为9,000的HRMS。双聚焦磁式扇形HRMS不仅提高了仪器的分辨率，而且提高了信噪比，这意味着化学噪音的降低、灵敏度的提高，〔4〕同时检测多个离子质量的能力较强，进行SIM时m/z值可长时间不发生漂移，进一步改进信噪比，提供极高的灵敏度，最小检出限可达10fg，更适合于PCDD/Fs分析要求，为多数二恶英分析实验室采用。基于HRMS的技术优势，EPA规定的1613方法采用同位素稀释法，利用HRGC-HRMS检测PCDD/Fs。其分析的关键点为：用13C同位素内标与样品前处理同时进行，监测样品制备的回收率、同位素稀释的准确度和GC-MS方法的确认。〔21，22〕采用标准考察异构体的GC分离和MS的定性定量的分析质量控制。严格控制硅胶、硅镁吸附剂、氧化铝、活性炭等的洗提回收。HRMS的分辨率要求在10000以上，保证SIM的灵敏度和稳定性，采用HRGC分离。质量控制措施包括：系统空白、回收试验、线性范围、各化合物的保留值窗口、氯取代的同位素峰簇比值、异构体的GC分离、质谱分辨率、信噪比、盲样核对以及用3个离子定性等。对所有被检测的离子，确定PCDD/Fs的存在必须要求其信噪比大于3:1，且分子的面积比和标准的离子碎片的偏差应在10%以内，由内标物得到的数据与标准物的偏差应在10%以内，标准物与内标的离子谱图应一致。〔4〕由于严格的分析质量保证体系，1613方法已经成为各实验室分析工作的基础。
串联质谱是另外一种可供选择的方案。在离子源中形成的离子被第一个质量分析器分离，然后选择某些离子进行碰撞裂解，再由第二个质量分析器检测裂解离子。如果第一个质量分析器为扇形HRMS，设定分离PCDD/Fs的M+碎片；第二个质量分析器为四极杆LRMS，分离M+—COCl特征碎片。这样仪器的选择性进一步提高，可不通过GC分离直接进样，快速测定TCDD。〔23〕但这一方法只能测定同系物，不能分离异构体。因此HRGC-MS/MS串联质谱就成为测定17种2,3,7,8-取代PCDD/Fs的要求，而这一仪器与HRGC-HRMS的购买和维护费用相当、灵敏度是其的1/6，HRGC-HRMS就成为首先选择。
最近美国FDA研究了利用较便宜的四极离子储存时间串联质谱（QISTMS）分析方法。〔9〕采用这一方法可以检测食品中TEQ低于1pg/g水平的2,3,7,8取代的PCDD/Fs（TCDD为0.2pg/g），分析了包括奶、羊脂、蛋、牛肉、鱼和油脂在内的200份物样品。测定污染样品鸡蛋和鲇鱼的结果与HRMS具可比性。FDA正对这一分析方法进一步改进，以期可达HRMS检测限，来替代HRMS进行食品PCDD/Fs日常监督。〔24〕
1.6结果报告　测定了17种2,3,7,8-取代的PCDD/Fs含量后，每个同系物异构体的浓度乘以相应的TEF，然后将结果相加。报告的结果就是毒性当量（TEQs）。结果报告时应根据相应的脂肪含量折算成以脂肪计的TEQs。
2    以Ah受体为基础的生物分析方法
尽管CAC认为HRGC-HRMS是目前唯一适合的分析方法，但由于所使用仪器价格昂贵，试样需多步分离、净化步骤十分繁琐，这一工作在大多数实验室不能开展。这显然不能适合食品卫生监督和监测工作的日常需要，国际上有些实验室试图建立一种以利用生物传感器为原理的快速检测方法。因为Ah受体是PCDD/Fs发挥毒性作用机制的基础物质，它的被活化程度与PCDD/Fs毒性相一致，而PCDD/Fs活化Ah受体能力与其TEQs有关，目前所建立的生物学筛选方法均据此进行。PCDD/Fs进入细胞浆与Ah受体结合活化后，被Ah受体核转位因子（ARNT）转移到细胞核，活化的核内基因是特异性DNA片段-二恶英响应因子（DRE），启动发挥毒性作用的基因增加其转录，如细胞色素P4501A亚型，激活芳香烃羟化酶（AHH）和9-乙氧基-3-异吩唑酮-O-脱乙基酶（EROD）。〔25～28〕以前已经有实验室用细胞培养通过EROD活性的测定来反应PCDD/Fs激活Ah受体的能力，得到PCDD/Fs的TEQs。〔4,29～32〕为了增加生物学方法的灵敏度，从P4501A1基因5'段分离DRE，并将萤火虫萤光素酶作为报告基因结合到控制转录的DRE上，制备成质粒载体。将这一质粒载体转染H4IIE大鼠肝癌细胞系（含Ah受体传导途径的各个部件），以此构成的CALUX系统萤光素酶诱导活性与PCDD/Fs有关，CALUX相对活性与PCDD/Fs的TEF相一致，所测定的结果就是TEQs。〔33～37〕这一方法已经与HRGC-HRMS化学方法进行对比，结果相当一致。〔37〕然而，采用细胞培养方法仍需要一定条件，同时培养时间多达24h，整个测定多达几天，不能进行快速检验,不适用于食品安全监督检验要求。有必要对Ah受体活化程度进行更直接测定。〔38〕在此基础上进一步改进,以Ah受体、ARNT和DRE为生物传感器的主要部件，测定转化的Ah受体。由于Ah受体与ARNT为1：1结合的同源二聚体，这一同源二聚体可以结合在生物素-亲和素系统的DRE上，采用酶标双抗方法测定ARNT，避免了抗体不能区别Ah受体的难点。由于该方法不再需要细胞内的诱导活化过程，体外活化时间由24h减少到2h，加上ELISA检测，整个分析在1个工作日完成。以Ah受体为生物传感器建立的免疫生物学方法一次可完成多个样品的检测，提取方法相对简单，所得结果就是TEQs，方法完成后可以满足卫生监督的大量筛选需要。
由于化学方法是对单个同系物进行测定，结果判定要以每个同系物的TEF乘以含量得到TEQs，所以CAC指出，利用DNA重组技术建立的PCDD/Fs免疫分析和生物分析方法，可以灵敏、特异地检测出TEQs，适合于大量样品的筛选。〔10〕但这种方法只能得到一个PCDD/Fs总量（同样以TEQs表示），而不能了解样品中PCDD/Fs的具体组成。因此一般认为这类方法可以用作筛选和用于特定条件下的监督管理（如在最近的PCDD/Fs事件中用于检测进口食品）。在筛选出阳性样品后，有选择地用质谱方法检测。目前尚没有这一类试剂盒商品正式上市。世界卫生组织正在注视这类方法的开发进展，因为对于广大发展中国家来说，这类方法十分适用。
3    结语
比利时二恶英污染事件之后，国际社会更加重视食品中二恶英的含量问题。食品中二恶英的检测技术再次引起世界的关注。HRGC-HRMS是目前唯一适用的选择方法，串联质谱方法有可能用于食品中二恶英的检测，以DNA重组技术建立的生物方法适合于大量样品的筛选检查。PCDD/Fs超痕量分析仍很复杂、困难，各实验室的分析能力及技术存在很大的差异。CAC正加紧制定食品中二恶英限量国际标准的步伐，各国在努力提高二恶英的检测水平，我国也需要尽快建立国际认可的检测技术。
基金项目：国家自然科学基金课题
作者单位：中国预防医学科学院营养与食品卫生研究所(100050)