主题:【第二届原创参赛】包涵体的复性及离子交换层析纯化工艺研究

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最近版里原创热风呼呼的刮~~于是我也特来跟风积极参与!近来一直在做包涵体的复性与纯化,就特来与大家分享,希望大家多多支持、指点

1.包涵体的分离纯化

    蛋白质的纯化是基因工程下游的关键内容,以包涵体形式表达的重组蛋白质的纯化研究一直是重组基因工程药物研究中的热点和难点。重组蛋白在宿主系统中高水平表达时,无论是用原核表达体系或酵母表达体系甚至高等真核表达体系,都可形成包涵体。蛋白表达后的分离纯化对蛋白的规模化生产也是至关重要的,所以本实验通过采用稀释复性、透析复性、离子交换层析、凝胶过滤层析等实验方法,研究探讨对分离纯化以及蛋白复性的最佳方法和条件。

1.2.1包涵体的复性

    重组蛋白质在分离纯化的过程中, 必须维持一定的浓度和生物活性形式, 以及防止被降解。从包涵体中获得有生物活性的蛋白,需要寻找一种简单而有效的复性方法。在小规模的蛋白复性研究及其进一步的纯化中,稀释复性是最常用的方法。但是稀释复性在商业规模生产中具有一定的缺陷,如需要较大体积的复性液,以及需要附加的浓缩步骤。许多其他方法也已发展起来,例如:透析、渗透、低分子量辅助物添加复性、离子和无离子表面活性剂辅助复性、聚乙烯乙二醇辅助复性等方法。

    在折叠反应中,从伸展态到中间体的速度是非常快的,只需要几毫秒,但从中间体转变为天然态的过程比较缓慢,是一个限速过程。聚集过程与复性过程相互竞争,故而应尽量避免聚集体的产生。一般认为,蛋白质在复性过程中涉及两种疏水作用,一是分子内的疏水相互作用,可促进蛋白质正确折叠;一是部分折叠的肽链分子间的疏水相互作用,在复性过程中,部分折叠的中间体的疏水簇外露,分子间的疏水相互作用会导致蛋白质聚集。蛋白质的立体结构虽然由其氨基酸的顺序决定,然而伸展肤链折叠为天然活性结构的过程还受到周围环境的影响,如温度、pH值、离子强度、复性时间等因素的影响。

1.2.2包涵体离子交换层析纯化

    为了获得高纯度的活性蛋白, 需要对复性的蛋白质进行进一步纯化。根据分离目标蛋白的特点(如P I、疏水性、氨基酸组成, 分子量大小、表面电荷的分布状况) , 然后确定分离方法, 从而正确选择最有效的分离介质,本实验采用SP Sepharose F.F 阳离子交换层析分离纯化重组蛋白

    离子交换层析是以蛋白质分子净电荷和表面电荷分布为分离基础的。具体说就是利用蛋白质带电性的差异,在离子吸附剂上静电吸附能力不同,用不同的pH 离子强度洗脱液洗脱,从而使蛋白质分离的柱层析方法。离子交换又分为阴离子交换和阳离子交换。离子交换剂又有强弱之分,强的离子交换剂在整个pH 范围内都是离子化的,而弱的离子交换剂通常仅在pH6~9 之间是离子化状态,因而后者对所适用的pH 范围又有了进一步的限制。

    在洗脱方式上,阳离子交换主要是改变pH ,它主要应用于等电点大于5 的蛋白质。20 种氨基酸中,大部分带正电或负电,这是IEC 应用范围广的原因。离子交换层析处理量大,附载系数高,一步缩小样品体积很多。离子交换层析去除杂质能力强,如对热原质,核酸、及电荷性有差别的蛋白均可去除。它还有一个特点,利用蛋白质在不同pH 和盐浓度下带电性的不同,通过不同条件下应用同种类型或不同类型介质,分步使目标蛋白质达到提纯目的,这是除亲和柱层析外,别的柱层析达不到的分离能力。离子交换层析原则上可放在纯化工艺的任何一步,它属吸附型层析,单步损失也较大。
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2 材料

主要仪器及设备


LRH-250-Z型振荡培养箱(广东医疗器械厂)
HH-B11电热恒温培养箱 (上海跃进医疗器械厂)
FA1004A电子天平(上海天平仪器厂)
台式高速冷冻离心机(德国Eppendorf公司)
立式高速冷冻离心机(日本三洋公司)
KS-600型超声波细胞破碎仪(宁波经济技术开发区科生仪器厂)
78HW-I型恒温磁力搅拌器(杭州仪表电机厂)
PHS-3C型pH计(上海雷磁仪器厂)
752型紫外可见分光光度计(上海第三分析仪器厂)
DYY-2C型电泳仪(北京六一仪器厂)
SP Sepharose Fast Flow离子交换层析(美国Amersham Biosciench 公司)
GDS-8000凝胶成像系统(法国Vilber Lourmat 公司)
DL-CJ-IND超净工作台(北京市东联哈尔仪器制造有限公司)
-80℃低温冰箱(丹麦HETO BIOTECH公司)
5L发酵罐(浙江东方生物工程设备技术公司)
TH-梯度混合仪(上海精科实业有限公司)
HL-200B恒流泵(上海精科实业有限公司)
BSZ-160F电脑自动部份收集器(上海精科实业有限公司)
AP-01P无油隔膜真空泵(天津奥特赛恩斯仪器有限公司)
300ml超滤杯(上海摩速科学器材有限公司)

2.4 主要溶液

(1)PBS缓冲液
(2)包涵体洗涤液
(3)包涵体溶解液
(4)复性液I
(5)复性液II
(6)复性液III
(7)复性液Ⅳ
(8)复性液Ⅴ
(9)染色液:
(10)脱色液
(11)6×非还原性上SDS-PAGE样缓冲液
(12)5×还原性SDS-PAGE蛋白电泳样品缓冲液
(13)49.5%丙烯酰胺
(14)16.5% 分离胶(15 ml)
(15)4% 浓缩胶(6 ml)
(16)Gel Buffer
(17)电极缓冲液
(18)Bradford储存液
(19)Bradford工作液
(20)LB培养基
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2010/7/30 23:25:13 Last edit by xiaodaren
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3 方法

3.1诱导表达

3.2 重组蛋白的分离纯化

3.2.1 诱导表达菌体的破碎


  培养液经诱导表达后,离心收集菌体,用超声buffer重悬,磁力搅拌20 min,使菌体分散均匀。冰浴中超声破菌(3秒/次,间隔9秒),使用Bradford法测蛋白浓度,直至浓度不再增加。

3.2.2 包涵体的分离、洗涤和制备

超声破碎的菌液,将悬浊液离心弃上清,沉淀即为包涵体,用PBS缓冲液洗涤沉淀后再使用包涵体洗涤液洗涤三次,洗涤过程在冰浴中充分搅拌,将悬浊液在离弃上清,所得沉淀即为制备好的包涵体,分析包涵体纯度。

3.2.3 包涵体的溶解

  包涵体溶解于包涵体溶解液,称重沉淀,用变性剂缓冲液溶解沉淀,冰浴中搅拌离心,收集上清。电泳检测。

3.2.4 重组蛋白的复性

3.2.4.1采用尿素梯度透析复性法对包涵体复性


采用尿素梯度透析复性法对包涵体复性,将上述上清液加入透析袋,调整蛋白质浓度透析后。分别收集上清和沉淀,进行电泳分析。

3.2.4.2采用稀释复性法对包涵体复性 

稀释复性进行电泳分析。

3.2.5 SP Sepharose F.F 阳离子交换层析分离纯化重组蛋白 

采用离子交换层析法,将复性后的样品用超滤浓缩后,离心将上清进行层析,上样于SP-Sepharose Fast Flow凝胶过滤层析柱,分别进行分步洗脱。并收集样品进行电泳分析。

3.3重组蛋白透析

收集含有目的蛋白浓度,纯度均较高的样品超滤。并收集样品进行电泳分析。

3.4重组蛋白冷冻干燥保存

将透析后的样品进行冷冻干燥成为粉状进行保存。

3.5 纯化产物的鉴定

使用Bradford法测纯化产物的总蛋白浓度。目的蛋白浓度=产物的总蛋白浓度×产物的纯度。并计算目的蛋白回收率。
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2010/7/30 23:29:31 Last edit by xiaodaren
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4. 结果
4.1包涵体的洗涤和溶解


包涵体经洗涤后溶解于包涵体溶解液,离心收集上清,经电泳检测可知,通过洗涤包涵体可以除去一些杂蛋白,包涵体纯度得到一定的提高。 (如图 1)



图1 包涵体洗涤后电泳检测
Mr::Marker ; 1:诱导表达沉淀
2:洗涤后包涵体


4.2重组蛋白的复性
4.2.1采用尿素梯度透析复性法对包涵体复性


变性后的重组蛋白采用梯度透析的方法降低变性剂浓度,透析后离心分离,收集上清,即为重折叠的重组蛋白,检测(图2)。



图2 重组蛋白透析复性后电泳检测


如图2所示包涵体在复性缓冲液后蛋白质所处环境变为天然状态,则有部分蛋白质析出,损失较大,由于在随后的离子交换层析实验过程中需要使用PB缓冲液洗脱,所以需将样品进一步透析于PB缓冲液中,由电泳检测图可见,此时杂蛋白条带消失,可能为透析后离心过程中,杂蛋白主要存于沉淀中而被去除。
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2010/7/30 23:31:17 Last edit by xiaodaren
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5讨论

    本实验在基因克隆表达包涵体的基础上进一步分离纯化目的蛋白,将基因工程菌发酵液经离心浓缩后,可用机械研磨、超声波处理法使细菌裂解,然后离心收集沉淀即为包含体。为了除去包含体上粘附的杂质,如膜蛋白或核酸,应用洗涤液洗涤包含体,实验结果表明包涵体不纯净时对复性蛋白产生重要影响,因此在复性前洗涤包涵体是十分必要的。

5.1 重组蛋白质的复性

包涵体的复性一直是影响蛋白质生物活性收率的关键点,为了得到具有天然构象的蛋白质和产生正确配对的二硫键,必须去掉过量的变性剂和还原剂,使多肽链处于一个氧化性的缓冲液中。这可通过稀释法把变性溶解的蛋白质直接加入到复性液中,也可通过透析或凝胶过滤法完全去掉变性剂和还原剂。

5. 1.2蛋白质浓度的影响

正确折叠的蛋白质的得率低通常是由于多肽链之间的聚集作用。蛋白质的浓度是促使蛋白质聚集的主要因素。折叠中间体在高浓度下产生的聚集通常是由于它们表面上暴露的疏水基团的相互作用而产生。折叠过程与蛋白质的浓度无关 。本实验复性液的蛋白获得较好的复性效果,复性后蛋白稳定性较高。

5.1.3 pH 和温度的影响

复性液的pH 值必须在7.0 以上,这样就可以防止自由硫醇的质子化作用影响正确配对的二硫键的形成,最适宜的复性pH 值一般是8. 0~9. 0。不同的蛋白质复性有其最适宜的复性温度。

5.2重组蛋白的分离纯化

对所得蛋白样品进行紫外光谱扫描,实验结果表明,经过离子交换可以有效地去除杂蛋白,而且离子交换层析可以处理大量的蛋白样品,适合于规模生产纯化。但是将层析后样品分别收集后超滤透析处理后电泳检测表明发现仍有杂蛋白的存在,可能为离子交换层析条件仍然不完善,需要进一步实验摸索其最佳条件,如对离子交换层析的洗脱梯度及pH强度等因素设定需要摸索得到最佳条件。

5.3蛋白的保存

  本实验目的蛋白在不同的温度生物活性变化不同,本实验通过透析方法除去蛋白溶液的盐离子从而达到最终纯化效果后,分装进行冷冻干燥保存。

这就是我的一些实验积累和心得~希望大家多多来支持哦~~
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2010/7/30 23:37:36 Last edit by xiaodaren
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原文由 lylsg555 发表:
光仪器就要准备20台


是啊~~这还是主要仪器呢~并不是全部哦~
遨翔的岁月
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beileilei
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写的不错,受益匪浅,不过有几个问题有些迷惑
1、你既然是用6M盐酸胍溶的包涵体,透析复性时为何要用尿素梯度稀释复性而不用盐酸胍梯度稀释复性呢?你的尿素浓度改变的确实很慢,但是你突然改变盐酸胍的浓度,蛋白难道不会沉淀吗?
2、你采用的稀释复性法是将复性液一下加入到包涵体溶解液里,这点我不太认同,我觉得应该反过来,应将包涵体溶解液分次(一次5~10ml)分时(每隔2~4h)加入到复性液里,这样可以避免折叠中间体与变性蛋白的结合与聚集。
3、最后请教你一下,我手头有一个蛋白55kD左右,pI8.5,带有His-Tag,如果采用稀释复性的话复性液pH值调到多少合适?你说要>7.0,但是离8.5太近又会导致蛋白沉淀。
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