主题：【转帖】原位杂交组织化学的方法和常用试剂配制！

【方法4】

　　（1）49ml氯仿与1mg二甲二氯硅浣（DMDC）配液；

　　（2）倒入每个拟硅化的试管或离心管中，浸泡5min后用乙醇或重蒸水冲洗；

　　（3）玻璃器皿使用前位于180℃以上烘烤2h以上，塑料器皿应于60℃烘烤过夜。

　　注意：DMDC有毒且高度挥发，应于通风环境操作并戴口罩、手套，避免接触皮肤或吸入。

　　（四）载片的包被（粘贴）

　　１．沾附剂

　　（1）多聚赖氨酸(poly-L-Lycine,PLL)

　　储备液（0～5%）: PLL 25mg,  DEPC水 5ml

　　按上述剂量充分混合，即为浓度为5mg/ml(0.5%)的PLL液。常分装成1ml的包装，-20℃存放。该液为储备液，可反复冻融，无明显影响。用前充分混合。

　　工作液（0.01%）：0.5% PPL, DEPC水 50ml

充分混合，静止待气泡消失。

（2）明胶液



配方: 明胶 2.4g, 甲明矾 2.4g, DEPC水 1000ml

　　配法：先称取明胶溶于500～800ml DEPC水中，加热搅拌助溶，待明胶完全溶解以后，加入甲明矾溶解后即可使用。注意，包被玻片时，明胶液温度最好保持在60℃左右，效果最佳。方法同PLL包被玻片。

　　2．多聚赖氨酸包被玻片的制备方法（其它包被剂相同）

　　（1）将事先准备好的经160℃以上烘烤，并冷却至室温的玻片（载片或盖片），在0.05%（也有用0.1%）的PLL液中上下浸蘸几下，分散开竖放在架子上，于空气中自然干燥，4℃备用。注意：①浸蘸时，务必使整个玻片完全浸于液体中，否则，包被不完全会产生标本脱落现象；②干燥过程中注意避免尘埃污染；③按上法处理的玻片通常可存放在一定时间（室温1月以上，4℃更长），但仍建议尽早使用。

　　（2）多聚赖氨酸1mg溶于10ml灭菌的去离子水或1mmol/L的Tris-HCl缓冲液中（pH7.0），将其涂布于玻片上，待干燥后即可使用。该法包被的玻片可用于细胞涂片和切片。

　　（3）将PLL工作液滴至盖玻片上5μl/片，用另一盖玻片以推血涂片方法推片，或用另一盖玻片紧贴于其上，相互磨擦以使两盖玻片相对的一面涂布上PLL。该法制备的玻片，只有一面是包被有PLL，故制备时，待其晾干后，应作好记号，然后保存后备用。

　　多聚赖氨酸可用于多种核酸杂交，方法简单，结果可靠，有许多其它方法不可比拟的优点。配制好的液体可存放于4℃或室温，但时间过长会解聚而失效，故建议使用时尽量新鲜配制。

　　（4）Vectabond粘附剂

　　该试剂是Vector公司新近推出的一种新型粘附剂。它与其它粘附剂的主要区别是：一般的粘附剂是通过物理性覆盖在玻片表面，天长日久，可能由于包被不完全或局部脱落而致切片等标本易于脱落。而Vectabond试剂是通过化学性作用，改变玻璃表面的分子结构，使标本贴附牢固，不易脱落，且保持时间长久，耗量小，价格便宜，一个包装7ml可配成350ml工作液使用。操作程序：

　　标本（铺片、切片等）→丙酮（5min）→Vectabond试剂工作液（5min）→dH2O(2×5min)→干燥（温箱，数小时过夜）→用铝箔包好，室温备用。

　　注意：制备和保存过程中避免污染。

　　经上述处理的载玻片一般可存放半年以上（4℃可更长）。

（五）硅鱼精子DNA的制备

　　（1）在50ml灭菌聚乙烯管中加入1g鲑精DNA，加入15ml DEPC水使其浸泡5min至2h；

　　（2）加入2.5ml 2mol/L HCl，室温放置，DNA形成白色沉淀，充分振摇至沉淀物相互缠绕在一起，用吸头尖端使之形成一球团状（2～3min）；

　　（3）加入5.0ml 2mol/L的NaOH。摇动小管使DNA悬浮、溶解，将小管置50℃15min助溶；

　　（4）用DEPC水将混合物稀释至175ml（总体积），充分混合，注意确保管内已无颗粒状；

　　（5）加入20ml/l 1mol/L的Tris-HCl缓冲液（pH7.4）；

　　（6）用2mol/L的HCl滴定至DNA溶解pH为7.0～7.5；

　　（7）用无菌微孔滤膜过滤液体，去除颗粒。260nm测定溶液的OD值，方法是：取20μl DNA液混合于980μl水中，混匀后测定，吸收值乘以50即为DNA浓度（μg/ml）；

　　（8）制备好的DNA液储于-20℃备用，用前取出冻融后煮沸。

　　二、关于探针的标记

　　（一）cRNA探针的同位素标记

1． 标记液（转录标记）

5X转录缓冲液                              2ul

DDT(400mmol/L                            1ul

线性化DNA探针(模板) (1ug/ul)                1ug

32P-CTP(12.5umol/L---50uCi                  5ul

RNA多聚酶(20u/ul)                    1ul

2． 转录缓冲液

Tris-HCl(pH7.5)  200mmol/L,  MgCl2  30mmol/L, 精眯 10mmol/L,

DTT  50mmol/L, BSA(不含RNA酶)  0.5mg/ml, HPRI 5000u/ml,

ATP,GTP,UTP各 2.5mmol/L,  CTP*

　　※：用地高辛或生物素标记时，用UTP替代。

3． 标记终止液

无RNA酶的DNA酶 1ul,  tRNA(10mg/ml)  1ul,  灭菌去离子水 188ul

4．标记探针水解液

0.4mmol/L 碳酸氢钠  20ul, 0.6mmol/L 碳酸钠 20ul, 灭菌去离子水 160ul.  先用dH2O悬浮探针，再加入后两种试剂，轻轻振摇混合，于60℃条件下反应。

　　5．探针水解时间


　　注：LO－探针初始长度（kb）

　　Lf－探针的终长度（kb）

　　K－0.11kb/min

6．探针水解终止液

    3mmol/L醋酸钠  6.6ul, 醋酸 1.3ul

　　每次加入充分混合，临用前配。

7．探针沉淀液

  7mmol/L醋酸胺 100ul,  纯酒精  750ul, rRNA(10mg/ml) 2ul

　　每次加入，充分混合，新鲜配制。

　　（二）寡聚核苷酸3’端标记（cRNA探针）

1． 标记反应液

寡核苷酸 20ng, 5X转录缓冲液  4ul, 32P-dATP(3000Ci/mmol/L) 7ul,

CoCl2  2ul,  末端转移酶  1ul, 灭菌去离子水  20ul.

　　2．终止液：0.2mol/L EDTA

3.探针沉淀液

    tRNA  1ul, 7mmol/L 醋酸胺  100ul, 纯乙醇  750ul

（三）cRNA探针非同位素标记（地高辛及生物素）

1． 标记液

5X转录缓冲液  2ul, 0.2mmol/L DTT 1ul, 模板DNA(1ug/ul) 1ul,

Dig-11-UTP(10mmol/L) *  1ul,  32P—CTP# 1ul,  RNA 聚合酶(20u/ul)

1ul,  无菌去离子水  3ul

　　*：生物素标记时为10mmol/L的生物素-11-UTP

　　#：为检测标记率而加。

　　2．转录标记终止液

　　（1）0.2mol/L EDTA：用于地高辛标记法

（2）生物素标记终止液：

  无RNA酶的DNA酶(1u/ul) 1ul,  tRNA(10mg/ml)  2ul,  HPRI 1ul,灭菌去离子水 186ul

　　（四）DNA探针标记常用试剂的配制

　　（1）10 ×缺口平移缓冲液：200mmol/l Tris-HCl,pH7.4含50mmol/L MgCl2;100mmol/Lβ-巯基乙醇、1mg/ml BSA。

　　（2）缺口平移反应终止液：200mmol/L NaCl;10mmol/l Tris-HCl,pH7.4; 11mmol/L EDTA; 0.5% SDS。

　　（3）DNaseⅠ:干粉状DNaseⅠ(2000～3000u/mg)溶于20mmol/l Tris-HCl, pH7.5中（1mg/ml）,10μl分装，-20℃保存一年。

　　（4）10×DNA聚合酶Ⅰ（Klenow片段）缓冲液：500mmol/l Tris-HCl,pH6.6;100mmol/L Mg－Cl2;10mmol/L DTT;0.5mg BSA。

　　（5）10×激酶缓冲液：500mmol/L Tris-HCl,pH7.4,50mmol/L MgCl2;20mmol/L DTT; 1.0mmol/L亚精胺。

　　（6）10×随机引物标记缓冲液；500mmol/l Tris-HCl,pH6.6;100mmol/L MgCl2;10mmol/L β-巯基乙醇；500μg/ml BSA。

　　（7）1×加尾缓冲液：100mmol/L二甲胂化钾，pH7.0,1mmol/l CoCl2 0.2mmol/L DTT。

　　（8）1mol/L MgCl2:MgCl2 47.60g溶于500ml水中，100ml分装，高压灭菌，室温保存。

　　（9）0.25mol/L EDTA(Ph8.0):EDTA 52.02g溶于400ml水中，调pH至8.0，加水至500ml，100ml分装，高压灭菌，室温保存。

　　（10）4mol/L醋酸钠：取无水醋酸钠82g溶于200ml水中，用醋酸调pH至6.5，加水至250ml，高压灭菌，或0.45μm膜过滤，室温保存。

　　（11）10% SDS：10g SDS（十二烷基硫酸钠）溶于50ml水中，加水至100ml，分装后室温保存。

　　（12）20×SSC：取NaCl 175.3g;柠檬酸钠88.2g;加水至1000ml，用10mol/l NaOH调pH至7.0；高压灭菌，室温保存。

　　（13）无菌水：100ml去离子水或双蒸水，分装，高压灭菌，室温保存，开瓶后仅限一周使用。

　　（14）10×激酶缓冲液：500mmol/L Tris-HCl,pH7.4;100mmol/L MgCl2;50mmol/l DTT;10mmol/L亚精胺（非必需）。

　　（15）T4多聚核苷酸激酶：10u/μl，保存在甘油中，-20℃。

　　（16）TE缓冲液（Tris/EDTA）：Tris,10mmol/l pH7.4(0.5ml 2mol/L贮存液)，1.0mmol/l ED－TA,pH8.0(20μl 0.5mol/L)贮存液，加水至100ml，室温保存。

　　（17）2mol/L Tris-HCl pH7.4:Tris242.2g溶于850ml，加浓HCl 75ml ,边加边缓慢搅动，至pH7.4,于加水至1000ml。

　　（18）1mol/L DTT(二硫苏糖醇)：3.0g DTT溶于20ml水中，分装，于-20℃贮存。

　　（19）0.5mol/L EDTA（乙二胺四乙酸二钠盐）：在烧杯中先加入300ml水，加入93.5g EDTA－Na2·2H2O,充分混匀，加10mol/l NaOH调pH至8.0,加水至500ml。

　　（20）10mol/L NaOH：200g NaOH溶于450ml水中，混匀，再加水至500ml。

　　（21）5mol/L NaCl：292.25g NaCl,加水至1000ml。

　　（22）1mol/L HCl：加86.2ml浓盐酸至913.8ml水中。

　　（23）1mol/L CaCl2：147g CaCl2：2H2O,溶于1000ml水中,高压灭菌,室温保存。

三、固定剂

　　进行原位杂交的组织或细胞标本常需经固定处理。尽管许多化学物质对组织/细胞有固定作用，但核酸原位杂交的理想固定液应具备如下特点：①能很好地保持组织细胞的状态；②对核酸无抽提、修饰及降解作用；③不改变被检核酸分子在组织细胞内的定位；④对核酸及探针的杂交过程无阻碍作用；⑤固定液本身对杂交信号无遮蔽、掩盖作用，如不使本底增加等；⑥理化性质稳定、价格低廉。

1． 4%多聚甲醛（Paraformaldehyde,PFA）

PFA 40g,  DEPC水 500ml, 2XPBS 500ml

　　配法：称取40g PFA溶于装有500ml DEPC水的玻璃容器（烧杯或烧瓶）中，持续加热磁力搅拌至60～65℃，使成乳白色悬液。用1.0mol/L的NaOH值至7.0，使呈清亮状（滴加），再加入约500ml 2×PBS※，充分混匀（在冰浴或冷水浴中），可再检测一下pH，过滤后定容至1000ml，室温或4℃保存备用。

　　注意：①配制时应在通风条件下操作，并避免接触皮肤和吸入（戴手套及口罩），因PFA有较强的固定作用及毒性，对粘膜及皮肤有固定及毒性，刺激作用；②加热时，温度不宜过高，常为60～65℃，否则，PFA降解失效；③配制好的PFA虽可存放一定时间，但过久的液体，固定效果下降，建议尽早使用。

　　配法：按上述比例称取试剂，溶于DEPC水（也可用蒸馏水加DEPC）500～800ml中，过滤后，加水定容至1000ml，高压灭菌。通常配制成10×PBS的储备液，2×PBS和1×PBS可用DEPC水稀释获得。

　　除用DEPC水配制PFA外，也有用灭菌蒸馏水或经DEPC处理的0.01～0.1mol/L的PBS配制的，方法及注意事项同上。

　　4% PFA是目前原位杂交组织化学技术中最常用的固定液，它能较好地保持组织及细胞内的RNA，同时对形态保持也较好。通常组织块固定4～12h，载片固定时间在10～15min以内，RNA含量较为恒定。过度延长固定时间会引起细胞内生物大分子的过度交联，影响探针的穿透力，降低杂交效率。

　　2．甲醛

　　①10%甲醛（Formaldehyde,FA）

　　量取市售甲醛(约40%)10ml和DEPC水90ml充分混合而可。较适于检测RNA的组织及细胞固定，也可用于新鲜冰片切片后固定。

　　②10%福尔马林试剂：

　　较适于固定细胞。

　　③10%中性福尔马林

　　市售甲醛　　　　　　　　　　　100ml

　　Na2HPO4　　　　　　　　　　　　　　　　4g

　　NaH2PO4　　　　　　　　　　　　　　　6.5g

　　DEPC水　　　　　　　　　　　～1000ml

　　常用于石蜡样品切片的固定。

　　10%的甲醛由于有促进DNA双链分子交联的作用，干扰DNA变性，故不适于DNA杂交。在组织或细胞原位杂交中，可通过使用含50%甲酰胺的杂交液使DNA变性解链而解决。这类固定液在DNA/RNA杂交中有较好的效果。

　　3．4%戊二醛效果较40%差。

　　4．0.1%戊二醛常用于固定组织，适于新鲜组织冰冻切片及石蜡切片的后固定，常用于检测DNA的原位组织杂交方法。

　　5．乙醇/醋酸（或冰醋酸）将乙醇与醋酸按3：1的体积比充分混合即可。该液较适于固定细胞的原位杂交，尤其检测DNA时。

　　乙醇/醋酸虽广泛应用于原位杂交中，但RNA保留较差，可本底很低，即背景染色淡。

　　6．甲醇/醋酸（3：1）用前按体积比3：1比例充分混合即可。

　　7．甲醇/丙酮（1：1）适于培养细胞的原位杂交技术。

　　8．4%多聚甲醇-0.5%～1%戊二醛溶液在pH7.4磷酸缓冲液中，用于免疫电镜样品固定。

四、LB培养基

　　（一）液体LB培养基（Luria-Bertani培养基）

　　配制：取一1000ml的烧杯，将事先称取好的试剂加入杯内，加H2O约500～800ml搅拌使其溶解完全。用5N的NaOH调pH至7.0,加入H2O定容至1000ml。15磅高压灭20min。

　　（二）琼脂糖平板培养基　

　　细菌培养用琼脂（或琼脂糖）　　　　15g

　　液体培养基（如LB）　　　　　　　　～1000ml

　　按浓度比例，将琼脂加入液体培养基（如LB）中，稍加搅拌，用纱布或纸封好瓶口，15磅高压灭菌20min。

　　五、小量质粒提取主要液体(见试剂盒)

　　六、杂交前处理

　　1．蛋白酶（Proteinawe K, Pro.K） 蛋白酶K主要用于杂交前标本处理，其作用是使组织达到一定消化，利于检测分子的穿透，从而提高检测方法的敏感性，但各种组织在不同条件下消化程度不一，因此，具体应用时，应根据组织种类、温度确定反应时间及酶的浓度。过度消化可使组织形态结构遭到明显破坏，核酸分子也会受到影响。通常是将其配成储备液（1mg/ml），临用前，再配成工作液（约0.025mg/ml）。配制方法：

　　精心称药，将二者充分混合后，分装成小份，-20℃存放，用时再取出冻融，余者弃去。

　　（2）工作液（临用前配）：

　　取储备液（1mg/ml）按1：40稀释，充分混合，即得约含Pro.K为25mg/ml的工作液。

　　称取上述试剂，充分混合即可。

　　②1mol/L 的Tris-HCl(pH8.0)：

　　③0.5mol/L的EDTA：

　　2．甘氨酸

　　（1）1mol/L甘氨酸：

　　（2）甘氨酸工作液（0.1mol/L）：

　　3．0.25%醋酸-0.25%醋酸酐

　　配制：按上述配方，先以少许DEPC水溶解NaCl 5g，然后加入三乙醇胺13.2ml及浓HCl 4ml。DEPC水定容至约1000ml(997.5ml)，临用前，一边摇动溶液一边加入醋酸酐2.5ml，充分混合。注意操作时避免浓HCl 溅出，最好在通风条件下进行。

　　生物体内有些组织，如神经组织中的蛋白质，对带负电荷的核酸探针较易吸附。经该液乙酰化处理后，可使切片标本表现带上负电荷，有排斥带负电的核酸探针，减少非特异吸附，降低反应背景的作用。

　　4．RNA酶 A溶液

　　取RNA酶A溶解于100ml DEPC水中，分装成小份（1ml,10mg/ml），-20℃储存。

　　临用前，取RNA酶A储备液，用2×SSC溶解配成工作液（0.01mg/ml）.

　　取2ml Triton X-100加入998ml PBS中，充分振荡使其充分混合。

　　七、杂交用液

　　1．SSC（Standard Saline Citrate, SSC）

　　通常配成10×，20×，50×的储备液.

　　2．Denhardt’s液

　　通常配成10×，50×或100×的储备液

　　3．杂交液及予杂交液

　　变性被打断的无关DNA（常为鲑精DNA或鲱精DNA）可在予杂交及杂交前加入。此外，有许多物质如肝素、多聚腺甘酸、醋酸钠等多种成份，可根据需要加入杂交液中，上述配方所列只是不可缺少的基本成份。

　　配制好的杂交液不宜反复冻融，否则易产生硫酸葡聚糖沉淀现象。使用前最好加热至50℃，使其充分溶解后再加入探针分子。至于探针的浓度视实验目的、探针类型及标记方法而异。通常RNA探针分子浓度为0.5～2μg/ml，DNA探针浓度为1μg/ml,此外，如使用35S标记的探针，还需加入终浓度为100mmol/L的二硫苏糖醇（Dithiothreitol,DTT）至杂交液及杂交后的洗脱液中。

　　八、杂交后漂洗溶液

　　无论用何种标记方法及何种信号显示方法，在杂交后洗脱则是大同小异。

　　九、原位杂交信号显示

　　目前应用原位杂交方法中，信号的显示主要有放射自显影，酶底物及免疫金银等方法，在此归纳有关的主要试剂。

1．A-B显影液

A液: 对苯二酚 0.85g,柠檬酸钠 2.35 g, 柠檬酸 2.55ml, 去离子水 50ml.

B 液: 硝酸银  93mg, 去离子水 50ml.

　　称取上述试剂，按配方分别溶于50ml ddH2O中，于显影前，在室温将两者（A液及B液）按1：1混合，稍加摇动促进混合，即可将贴有切片标本的切片放入显影液，于室温避光（可暗室）反应5～15min。显影时间和温度相关，需自己根据情况摸索。终止反应只需将显影液倒出，自来水冲洗即可。倒出的AB显影液可暂时不扔，光镜下观察，若明显显影不够，还可重新或继续显影。AB显影液要求临用前配制，在显影时才将AB二液混合。否则，A液过久会产生黄色沉淀，增加背景。

　　AB液用于免疫金银法中，使金标记颗粒信号放大，形成棕黑色沉淀。

　　2．DAB-H2O显色液

　　该液用于标本被标记上辣根过氧化物酶（HRP）的方法。产物为棕黄色。

　　3．NBT-BCIP显色液

　　该液用于有碱性磷酸酶标记物的方法中。产物为紫蓝色。

　　4．Kodak D-19显影液

　　5．Kodak F-5定影液（酸性坚膜定影液）

多谢楼主分享。

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