主题:【已应助】【求助】关于hilic色谱柱分析氨基糖苷类的问题

浏览0 回复32 电梯直达
wh2008
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该帖子已被capinter设置为精华;
最近在开展氨基糖苷类(包括卡那霉素\庆大霉素\链霉素\双氢链霉素\新霉素\安普霉素等)的检查,虽然有国标使用c18在做,但考虑到七氟丁酸容易污染到质谱,很是怕怕,所以就选择了hilic色谱柱。

第一次接触hilic色谱柱,遇到了以下问题:

现象:
1. 使用等度洗脱,乙腈:水=90:10,所有项目的保留时间都在2.6min附近。
2. 使用梯度洗脱,流动相还是乙腈:水,每个项目出现了两个保留时间,一个还是在2.6min附近,另一个在9min附近,两个保留时间都是在乙腈比例最高的时候出现。
3.怀疑出现的峰是色谱柱被洗脱掉的物质,使用空白水进行测试(以上标准品使用水溶解),未出峰。排除是色谱柱及液相系统的问题,说明这些峰应该是想要的标准品峰。
4.从论坛资料查询到的,有人说是用乙酸铵或甲酸铵可以,经测试,加入铵后,标准品不出峰或惨不忍睹。我使用的是10mM的浓度,不清楚是否是浓度太高的问题,但我觉得可能性不大。

疑问:
1。所有的标准品保留时间一样,非常奇怪,很是怀疑这到底是不是我要的标准品峰。
2。跑标准曲线,不成线性,甚至部分项目低浓度的感度高于高浓度的,郁闷。。。
3。保留时间无法再向后拖了,因为乙腈的比例够高了,应该再怎样改变保留时间呢?

自己也搜索了一些资料,可是还没有一个比较完善的关于HILIC色谱柱的使用方法的资料,论坛中有人说使用HILIC是可以分析这些物质的,但给出的资料或说明又难以让人信服。

所以,希望对HILIC了解或正在使用HILIC的大侠多多给点意见,如果有人确实在做这几种物质的话(使用HILIC),小生那更是感激不尽了。。。。

欢迎大家在此热烈讨论。。。

更新:在论坛上搜到了个HILIC方法开展指南,给大家分享下。

欢迎继续探讨,希望这个帖子能够成为hilic开展方法的探讨贴。。。

更新:
看了些资料,hilic色谱柱使用需要以下注意事项
1。流动相至少需要5%的极性溶剂(如水,甲醇等)
2。流动相需要不低于40%的有机相(如乙腈)
3。使用甲酸铵或乙酸铵能得到较好的重现性。
4。定溶液不能使用100%的水
5。平衡时间比较长,一般需要10倍以上的柱体积平衡

更新:
经过一段时间的测试,通过使用hilic色谱柱目前还没有得到良好的效果。
使用资生堂的一款链霉素专用色谱柱,保留特性不错,只是感度还有点差,需要再进行优化。
由于最近忙于粘杆菌素的开展,氨基糖苷类的测试需要拖一拖了,如果,谁也在做粘杆菌素,不妨也来讨论下。
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Charles911
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我前段时间做HILIC的时候,也遇到这个问题,所有标准品保留时间一样的,也没找到是什么原因,感觉跟以前的C18差别不只是正反相的问题,差太多了,继续学习中
netsking
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在坛子里找一找. 记得有一篇文献是比较Hilic与C18的, 可能会有帮助. 本人只用过Amide的柱做UV分析, 经验有限.
ahciqhx
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该项目使用HILIC的话,可以参照wates公司的一个方法,使用甲酸-甲酸铵缓冲体系,可以将峰延迟十几分钟的。但是需要平衡很长时间。
wh2008
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原文由 netsking(netsking) 发表:
在坛子里找一找. 记得有一篇文献是比较Hilic与C18的, 可能会有帮助. 本人只用过Amide的柱做UV分析, 经验有限.


我们也在用amide做三聚氰胺 msms方法。
wh2008
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原文由 ahciqhx(jerry206) 发表:
该项目使用HILIC的话,可以参照wates公司的一个方法,使用甲酸-甲酸铵缓冲体系,可以将峰延迟十几分钟的。但是需要平衡很长时间。

是否有相关资料?感谢回答。
wh2008
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wh2008
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论坛版主招募|新窦
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“1. 使用等度洗脱,乙腈:水=90:10,所有项目的保留时间都在2.6min”
感觉这更像是C18柱走出来的结果。

不知楼主当时的HILIC新柱是如何进行活化的?新柱必须进行正常的活化步骤色谱柱才可能以HILIC模式工作的。
yijinjun
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药典有金典的方法,用蒸发光散射检测器,效果不错,但对色谱柱的损伤比较大
wh2008
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原文由 新窦(capinter) 发表:
“1. 使用等度洗脱,乙腈:水=90:10,所有项目的保留时间都在2.6min”
感觉这更像是C18柱走出来的结果。

不知楼主当时的HILIC新柱是如何进行活化的?新柱必须进行正常的活化步骤色谱柱才可能以HILIC模式工作的。


感谢回答。

活化时跟c18活化一样,使用乙腈和水冲洗的。
我现在也怀疑是不是柱子被我弄坏了,看资料中说新柱子最好用乙腈:10mM缓冲盐(甲酸铵)(50:50)或0.2%的添加剂(我理解是指甲酸)来平衡,难道差别真的这么大?
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