主题:【讨论】蛋白污染的C18柱,怎样清洗好呢?

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xuanleer
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受蛋白类污染的硅胶基质反相柱,纯有机溶剂如乙腈或甲醇不能溶解多肽和蛋白质,所以清洗能力是不强的。那么其他的方法呢?
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xuanleer
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很多情况下,用有机溶剂、缓冲液和酸,有时还加上离子对试剂等组成的配方清洗效果不错,但是每个物质的作用是什么,加这些的原理是什么?
xuanleer
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清洗用的流动相配比呢?按照样品中蛋白的含量自行调整吗?
xuanleer
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还有一点,蛋白的样品,一般都是水溶性很好的,流动相中水相比例是很高的,我猜测为了印制蛋白的电离,经常流动相中还要加缓冲盐调PH,这样的话,对于不能耐受纯水的柱子,无疑是个重创啊。所以比较好奇,做蛋白样品的话,平时是如何保养柱子的?
happy爱米粒
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生物样品污染的柱子的清洗方法
1%的乙酸水溶液
1%的三氟乙酸水溶液
0.1%四氢呋喃/正丙醇= 40/60(需降低流速)
三乙胺/正丙醇= 40/60(混合前用磷酸调pH至2.5)
或者:将色谱柱反转,与检测器断开,用5倍柱体积的100%异丙醇清洗,然后使用3~5倍柱体积的二氯甲烷,3~5倍柱体积的异丙醇,最后再返回原始的溶剂体系
上海安谱
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原文由 木有才(xgy2005) 发表:
生物样品污染的柱子的清洗方法
1%的乙酸水溶液
1%的三氟乙酸水溶液
0.1%四氢呋喃/正丙醇= 40/60(需降低流速)
三乙胺/正丙醇= 40/60(混合前用磷酸调pH至2.5)
或者:将色谱柱反转,与检测器断开,用5倍柱体积的100%异丙醇清洗,然后使用3~5倍柱体积的二氯甲烷,3~5倍柱体积的异丙醇,最后再返回原始的溶剂体系

木老师,方法是哪里来的?有没有问题?
tangtang
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happy爱米粒
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原文由 上海安谱(sh100959) 发表:
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生物样品污染的柱子的清洗方法
1%的乙酸水溶液
1%的三氟乙酸水溶液
0.1%四氢呋喃/正丙醇= 40/60(需降低流速)
三乙胺/正丙醇= 40/60(混合前用磷酸调pH至2.5)
或者:将色谱柱反转,与检测器断开,用5倍柱体积的100%异丙醇清洗,然后使用3~5倍柱体积的二氯甲烷,3~5倍柱体积的异丙醇,最后再返回原始的溶剂体系

木老师,方法是哪里来的?有没有问题?


安谱老师好,这是参考别的厂商的培训资料,没试验过,如果不放心,酸的浓度可以放低一些,呵呵
xuanleer
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原文由 木有才(xgy2005) 发表:
生物样品污染的柱子的清洗方法
1%的乙酸水溶液
1%的三氟乙酸水溶液
0.1%四氢呋喃/正丙醇= 40/60(需降低流速)
三乙胺/正丙醇= 40/60(混合前用磷酸调pH至2.5)
或者:将色谱柱反转,与检测器断开,用5倍柱体积的100%异丙醇清洗,然后使用3~5倍柱体积的二氯甲烷,3~5倍柱体积的异丙醇,最后再返回原始的溶剂体系

木老师,方法是哪里来的?有没有问题?


安谱老师好,这是参考别的厂商的培训资料,没试验过,如果不放心,酸的浓度可以放低一些,呵呵


感觉是再生的方法。
xuanleer
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试了一下百分之十的三氟乙酸水溶液比90的乙腈,反向低速冲柱子过夜,不接检测器,结果柱子好了,不再分叉。
52nimo
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反正做蛋白实验时用的流动相加的三氟乙酸
加三氟乙酸后就是要调下PH 不然太低了
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