流式细胞术(Flow Cytometry, FC)是一种强大的生物学技术,用于快速分析和分类单个细胞或其他微粒。这项技术可以同时测量每个细胞上多个参数,如大小、内部复杂度、荧光标记强度等,并且可以在短时间内处理大量样本。以下是流式细胞术的基本原理:
### 样本准备
首先,需要准备一个细胞悬浮液。这通常涉及到细胞的分离、清洗以及染色。染色可以使用特异性抗体或其他荧光染料来标记细胞表面或内部的特定分子。这样就可以针对不同的细胞亚群进行分析。
### 流动室(Hydrodynamic Focusing)
在分析过程中,细胞悬浮液被引入一个细小的喷嘴(通常称为流动室)。在这个喷嘴中,细胞悬浮液被两条或更多条鞘液(sheath fluid)包围,形成一个稳定的单细胞流。这种设计确保了细胞一个个通过激光束,而不是成团通过。
### 激光照射与散射光收集
当单个细胞通过喷嘴时,它们会被一束或多束激光照射。激光照射引起两种类型的光学信号:
- **散射光(Scatter Light)**:细胞对激光的散射特性提供了关于细胞大小和复杂性的信息。前向散射光(FSC)主要反映细胞大小,而侧向散射光(SSC)则反映细胞内部的复杂程度。
- **荧光信号(Fluorescence)**:如果细胞被标记了荧光染料,则会发出荧光信号。荧光信号可以用来检测细胞表面或内部特定分子的存在及数量。
### 数据采集与分析
通过激光照射后,散射光和荧光信号由光电倍增管(PMTs)或其他类型的检测器接收。这些信号被转换为电信号,并通过数据处理软件转换为数字形式的数据点。这些数据点通常以二维散点图的形式展示出来,使得研究人员可以根据多个参数对细胞进行分群和分析。
### 细胞分选(Cell Sorting)
除了分析功能之外,某些流式细胞仪还具备细胞分选的功能。在这种情况下,通过喷嘴的细胞会在通过激光区域后被赋予电荷,并通过静电场引导进入不同的容器中。这样可以将感兴趣的细胞群体从混合样本中分离出来,用于进一步的研究或实验。
总之,流式细胞术是一种高度敏感和多功能的技术,它不仅可以快速地获取大量的细胞参数,还可以实现高精度的细胞分选。这一技术在免疫学、肿瘤学、干细胞研究等多个领域都有着重要的应用。