主题:【讨论】蛋白水解液中多肽的测定色谱峰异常?

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有水有渝
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一,蛋白水解液前处理:

取适量约(1ml)蛋白水解液置5mL离心管,加水1ml稀释后加入15%三氯乙酸溶液1ml,乙腈5滴,振摇5min后静置10min(尽量使蛋白质沉淀完全)。离心15min,吸取上清液3d,用0.1%的磷酸溶液稀释至约2.5ml,摇匀。过0.22um滤膜。

二,色谱条件:

流动相:A  0.1%磷酸溶液;

                B  0.1%磷酸溶液-乙腈(80%20%);
       

检测波长:λ1215nm  λ2280nm ;  色谱柱:C18柱 4.6*250mm

流速: 1.0ml/min

柱温: 30

进样量:20ul





峰形如此,感觉是很多峰没有分离开,大家觉得分析方法哪里可以改进?
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tangtang
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yssb2012
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原文由 有水有渝(xky0230699) 发表:
一,蛋白水解液前处理:

取适量约(1ml)蛋白水解液置5mL离心管,加水1ml稀释后加入15%三氯乙酸溶液1ml,乙腈5滴,振摇5min后静置10min(尽量使蛋白质沉淀完全)。离心15min,吸取上清液3d,用0.1%的磷酸溶液稀释至约2.5ml,摇匀。过0.22um滤膜。

二,色谱条件:

流动相:A  0.1%磷酸溶液;

                B  0.1%磷酸溶液-乙腈(80%20%);
        梯度洗脱


检测波长:λ1215nm  λ2280nm

流速: 1.0ml/min

柱温: 30

进样量:20ul



峰形如此,感觉是输送机很多峰没有分离开,大家觉得分析方法哪里可以改进?
  可不可以尝试一下改变溶液浓度
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2012/3/24 14:57:38 Last edit by yssb2012
有水有渝
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已补充说明使用的是C18柱,已用TCA沉淀大部分的蛋白质。15-20min这一段完全没有要分离的迹象,如果再降低有机相比例,那分析时间太长。
Alex0802
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柱子的柱效高吗?是5um的填料吗?其次,你进样浓度大概是多是,是否过载,此图有点像过载的样子! 或试一下其他的酸吧(TFA,AcOH等),建议A和B中都加一定比例的乙腈!
有水有渝
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原文由 Alex0802(zhao3220g) 发表:
柱子的柱效高吗?是5um的填料吗?其次,你进样浓度大概是多是,是否过载,此图有点像过载的样子! 或试一下其他的酸吧(TFA,AcOH等),建议A和B中都加一定比例的乙腈!


TFA还在购买中,由于检测波长选择为215nm,不适合使用AcOH,样品浓度无法估计,因为没有对照品,实际情况是这个多肽的组成成分完全不知道。
sungw
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蛋白水解液能分成啥样,看许多柱子公司自己发的BSA水解液,都是上百个峰,建议用TFA试试吧,还有就是C18的柱子选择300A孔径,对分离效果应该有好处!
梯度也可以适当调整下吧,前面峰密度大,缓一点,后面峰少就陡一点喽,呵呵,纯属纸上谈兵哈,几年前做过水解蛋白的纯化,痛苦的经历……
该帖子作者被版主 xky02306992积分, 2经验,加分理由:感谢参与讨论
有水有渝
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原文由 tangtang(tangtang) 发表:
多肽分离是不是要用凝胶柱?


小分子量多肽可以用反相柱,大分子和蛋白质要用凝胶柱。

上次的分析图,分析方法相同,反应液反应时间较短
sungw
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liufeilzu
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有水有渝
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这个梯度也是从参考文献上得来的,等有空改进一下再来回复。
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