主题:【第十三届原创】荧光定量PCR实验失败原因分析——ROX设置不当

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荧光定量PCR实验失败原因分析——ROX设置不当

这事发生在用荧光定量PCR检测非洲猪瘟病毒核酸的时候,作为荧光定量PCR实验失败的一个案例,写出来供大家借鉴。

1背景资料

201811月底,省疫控中心开展非洲猪瘟病毒核酸检测培训,随后进行检测资格授权所需的能力考核。因当时国内尚无商品化的非洲猪瘟荧光定量PCR检测试剂盒,采用的办法是qPCR预混液及下发的引物探针,考虑到系统内多数实验室的荧光定量PCR仪是ABI7500,同时还下发了ROX

2开展检测

培训结束后马上领样品回来检测,结果比较理想,顺利通过了能力考核,取得检测资格授权。随后对采集的样品开展检测,幸好均未检出非洲猪瘟阳性样品。

3实验失败

随着检测工作的发展,qPCR预混液即将用完,而商品化检测试剂盒也已有上市,遂改用商品化试剂盒检测。第一次改用试剂盒,慎重起见将原先能力考核的样品用于验证,结果实验失败,扩增曲线图如下:



4分析原因

回顾检测过程,核酸提取、反应体系配置、反应条件设置等均无问题,只是原来我们每次在反应体系中均添加ROX,在软件中也设置了ROX参照,这一次……我们尽管没有添加ROX,但还是习惯成自然,还是在软件中设置了ROX参照,会不会是这里设置不当?

说干就干,在软件中将参照物由ROX改为NONE,刷新一下结果,果然是参照设置不当造成的。

扩增曲线如下:



5讨论

对于ABI7500来说,添加了ROX,最好在参照中也设置为ROX,这样可以确保您获得均一的定量PCR实验结果。因为据介绍,使用ROX可以达到以下效果:

——校正单次反应运行中由于泡沫或蒸发/冷凝而导致的信号改变;

——为故障分析提供一项强有力的诊断工具:每次循环采集参比染料信号,不受PCR反应影响;

——均一化校正由于移液误差或蒸发所导致的批内体积差异;

——均一化校正批间体积差异,提供更连续一致的批间重复Ct值。

但在未添加ROX的情况下,ABI7500软件却千万不能将参照设置为ROX,否则会造成意想不到的后果。
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你好 请问该如何在跑完之后改变参照物并刷新结果呢
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