主题：【求助】ODS柱与ODP柱的区别

原文由 maple032023 发表:
ODS柱与ODP柱有什么区别呢？能不能相互替代呢？谢谢

最常用的"万能柱"填料为"C18"，简称"ODS"柱，即十八烷基硅烷键合硅胶填料（Octadecylsilyl，简称ODS）。这种填料在反相色谱中发挥着极为重要的作用，它可完成高效液相色谱70～80％的分析任务。由于C18(ODS)是长链烷基键合相，有较高的碳含量和更好的疏水性，对各种类型的生物大分子有更强的适应能力，因此在生物化学分析工作中应用的最为广泛。近年来，为适应氨基酸、小肽等生物分子的分析任务，又发展了CH、C3、C4等短链烷基键合相和大孔硅胶（20～40μm）。 按键合到基质上的官能团可分为： ⑴反相柱：填料是非极性的，官能团为烷烃，例如：C18(ODS)、C8、C4等。 ⑵正相柱：填料是极性的，官能团为－CN氰基、－NH2氨基等。 ⑶离子交换键合相： 阳离子官能团：－SO3H磺酸基、－COOH羧基等。 阴离子官能团：―R4N＋季铵基、-氨基等。 ( 由于硅胶基质的键合相只能在pH＝2～7.5的范围内使用，而离子交换色谱要求有更宽的pH范围，因此其基质现在仍主要使用聚苯乙烯和二乙烯苯。) 流动相： 反相色谱最常用的流动相及其冲洗强度如下： H2O＜甲醇＜乙腈＜乙醇＜丙醇＜异丙醇＜四氢呋喃 最常用的流动相组成是："甲醇-H2O"和"乙腈-H2O"，由于乙腈的剧毒性，通常优先考虑"甲醇-H2O"流动相。 反相色谱中，溶质按其疏水性大小进行分离，极性越大疏水性越小的溶质，越不易与非极性的固定相结合，所以先被洗脱下来。流动相的pH对样品溶质的电离状态影响很大，进而影响其疏水性，所以在分离肽类和蛋白质等生物大分子的过程中，经常要加入修饰性的离子对物质，最常用的离子对试剂是三氟乙酸（TFA），使用浓度为0.1％，使流动相的pH值为2～3，这样可以有效地抑制氨基酸上α羧基的离介，使其疏水性增加，延长洗脱时间，提高分辨率和分离效果。 完全离子化的溶质，例如强酸或强碱，其在反相键合相上的保留值很低，近于死时间流出，不能进行分析。根据离子对色谱的原理将一种与样品离子电荷（A＋）相反的离子（B－），称为对离子，加入到流动相中，使其与样品离子结合生成弱极性的离子对，即中性缔合物，从而增强了样品的疏水性，加大了保留值，改善了分离效果。 正相色谱常用的流动相及其冲洗强度的顺序是： 正己烷＜乙醚＜乙酸乙酯＜异丙醇 其中最常用的是正已烷，虽然其价格较贵，但80％的顺、反和邻位、对位异构体仍然要用正相色谱来进行分离。流动相的选择原则是：①样品易溶，且溶解度尽可能大。②化学性质稳定，不损坏柱子。③不妨碍检测器检测，紫外波长处无吸收。④粘度低，流动性好。⑤易于从其中回收样品。⑥无毒或低毒，易于操作。⑦易于制成高纯度，即色谱纯。⑧废液易处理，不污染环境。







ODP系列色谱柱是聚合物型的C18键合相的反相柱，聚乙烯醇填料耐碱，可以在碱性条件下使用，适合分析某些碱性化合物，耐酸、碱洗，使用寿命长。
各种ODP柱的相关指标如下：
柱名 理论板数 粒径(µm) 尺寸（mm）
ODP-40 4D > 11,000 4 4.6 x 150
ODP-40 4E > 17,000 4 4.6 x 250
ODP-50 6D > 9,000 5 6.0 x 150
ODP-50 6E > 14,000 5 6.0 x 250
ODP-50G 6A 保护柱 5 6.0 x 10
ODP-50 4B >2,500 5 4.6 x 50
ODP-50 4D >9,000 5 4.6 x 150
ODP-50 4E >14,000 5 4.6 x 250
ODP-50G 4A 保护柱 5 4.6 x 10
ODP-50 2D >5,000 5 2.0 x 150
ODP-50G 2A 保护柱 5 2.0 x 10

效果不一样，肯定不能替代的

效果肯定是不一样的，两种柱子是不相互代替的