主题:【第三届原创大赛】Sephadex LH-20使用全攻略

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Sephadex LH-20使用全攻略

凝胶
背景介绍
    《天然药物化学》一书中写道:凝胶的种类很多,常用的有葡聚糖凝胶(Sephadex G)和羟丙基葡聚糖凝胶(Sephadex LH-20)。其中,Sephadex G型只适于在水中应用,且不同规格适合分离不同分子量的物质;Sephadex LH-20可以在水、有机溶剂、或水+有机溶剂的混合溶剂中使用。
    商品凝胶还有丙烯酰胺凝胶(Boi-Gel P)、琼脂糖凝胶(Sepharose Boi-Gel A)以及结合了不同离子交换基团的葡聚糖凝胶衍生物,如羧甲基交联葡聚糖凝胶(CM-sephadex)、二乙氨乙基交联葡聚糖凝胶(DEAE-sephadex)、磺丙基交联葡聚糖凝胶(SP-sephadex)、苯胺乙基交联葡聚糖凝胶(QAE-sephadex)等等,分别具有不同的特色及应用范围。
    本贴主要讲述Sephadex LH-20的相关内容,包括原理、洗脱溶剂、样品处理等方面内容。

Sephadex LH-20基础知识
        Sephadex LH-20中的数字“20=吸水量×10”,也就是说,该凝胶吸水量为2.0ml/g
    相比于硅胶、ODS、聚酰胺等填料,Sephadex LH-20很贵(具体价格不清楚,有兴趣可百度)。
    注:就算是有钱的实验室,在使用凝胶的时候也是比较小心的,所以大家在使用的时候要多留意,不要污染,不要浪费等等。

Sephadex LH-20分离原理
    1. 分子筛作用——按分子量大小分离物质(凝胶过滤作用),流动相一般为非极性溶剂。分子量大的化合物先被洗脱下来,分子量小的化合物后被洗脱下来。
    2. 反相分配作用——流动相一般为反相溶剂,极性大的化合物先被洗脱下来,极性小的化合物后被洗脱下来。
    注:我们一般使用的是其分子筛作用,对于反相分配作用则使用较少。不过,我曾听一位师姐说,她有一个样品在进行凝胶柱色谱的时候,分子筛作用不明显,后来是利用反相分配作用(甲醇/水系统)进行纯化的。

Sephadex LH-20流动相
    1. 分子筛作用,常用的是甲醇、甲醇+氯仿混合溶剂。甲醇:氯仿一般为11左右,切不可用氯仿做为流动相!氯仿比重大,用单纯的氯仿做流动相,填料将浮起来,严重影响分离效果!!
    2. 反相分配作用,常用的是甲醇/水,比例可以根据实际情况进行调整,也可以是梯度洗脱(跟反相高效液相相似)。
    注:以上提到的流动相为本人实际操作过程中常用的,Sephadex LH-20还可使用其他很多溶剂作为流动相,如乙酸乙酯、二氯甲烷、丙酮等等,由于本人使用较小或者未曾使用,此处不妄加讨论。

样品的处理及洗脱过程
    1. 最重要的一点:用尽可能少的溶剂溶解样品,样品可以很浓。如果溶解体积很大,一定要先进行浓缩,否则基本没有多大的分离效果。上样体积,按书上的说法,不宜超过柱子体积的1/10,我个人不爱计算这些,反正尽可能的少就对了。
    2. 很重要的一点:尽可能用起始洗脱溶剂溶解样品(很多情况下样品并不能在起始溶剂中很好地溶解)。如果样品极性较大,可以使用甲醇或者一定比例的甲醇/水溶解;如果样品极性较小,可以使用少量氯仿溶解,然后加入少量甲醇稀释,或者直接用一定比例的氯仿/甲醇溶解。
    3. 必须做到的一点:样品过滤,否则可能堵塞凝胶柱,还有可能对凝胶造成污染。另外,如果不过滤,样品中可能含有未溶解“样品颗粒”,这些颗粒将在洗脱的过程中慢慢溶解,到时候,所以的流分都会含有“样品颗粒”的成分,交叉严重。我们通常的做法是,在滴管内塞入棉花,用力“堵”上,然后过滤就可以上样了。没有必要用过滤膜或者滤头等相对“高级”的过滤系统。
    4. 凝胶的洗脱,速度要慢,一般而言,速度越慢效果越好。我一般控制在2~3秒流下一滴,更慢的时候,4~5秒一滴。当然,也不要走极端,弄成7~8秒一滴,这样太慢,样品在凝胶里扩散严重,影响分离效果。上样之后,中间不要间断,一口气跑完(扩散的影响是很大的),基本上一天就能完成一个样品的。
    5. 从柱子上洗脱下来的流分,在允许的范围内,接得越细越好。洗脱完毕以后可以用TLC进行检测合并(还是那句话:注意随着溶剂的挥发,看看各流分有没有结晶哈)。

Sephadex LH-20其它细节
    1. 凝胶的装填要选择细长的柱子,这样分离效果才好。千万不要因为追求凝胶柱的数量,而将原本不多的填料分装成几个柱子,这样绝对得不偿失。
    2. 对于一些小分子类化合物,进行Sephadex LH-20柱色谱的时候,可能死吸附会比较严重。因此在决定是否使用Sephadex LH-20的时候,要慎重。
    3. 一般样品不是特别杂的时候,可以考虑使用Sephadex LH-20进行分离。对于量大的样品,如果没有足够的Sephadex LH-20填料,可以分批进行分离,也可以一次性上样完成,然后就交叉部分再进行分离。
    4. 使用甲醇/水为流动相的时候,由于含水,溶剂往往不容易挥散,时间长了还可能长霉,可以考虑用旋转蒸发仪将其蒸干。
    5. 流动相的置换:如果当前使用的是20%甲醇/水,下一批样品要使用氯仿/甲醇(1:1)进行作为流动相。这时候,需要先将其置换成甲醇,然后置换成氯仿/甲醇。在置换的过程中,极性变化不在太大,否则容易产生气泡。
    6. 接第5点,如果是柱头部分产生气泡,用玻璃棒或者细长的铁丝就气泡搅出来就可以了;如果是柱尾部分产生气泡,可以用流动相慢慢冲出就可以了;如果是柱子中间部分,实在没办法除去,可能就面临重新的命运了。
    7. 接第6点,如果在上样的过程中,由于疏忽,柱子干了怎么办?如果只干了一部分,可以及时加入流动相解救;如果全干,没办法,一般分离失败,重做吧。

Sephadex LH-20保存及污染处理
    1. Sephadex LH-20可以反复再生使用,而且柱子的洗脱过程往往就是柱子的再生过程。
    2. 暂时不用,可以水洗——含水醇洗(醇的浓度递增)——醇洗,最后泡在醇中贮于磨品瓶中备用。长期不用时,可以以上处理基础上,减压抽干,再用少量乙醚洗净抽干,室温充分挥散至无醚味后,60~80度干燥后保存。
    3. 如果填料被污染,按书上的说法,可依次用水——NaOH-NaCl水溶液——水——甲醇冲洗柱子(NaOH-NaCl水溶液配法:8gNaOH30gNaCl1000ml水)。(注:上次跟实验室同学聊天,说是NaOH-NaCl水溶液可以部分溶解Sephadex LH-20填料,未曾确证,各位处理的板友麻烦帮忙留意一下,谢谢)。
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如果使用的过程中,柱子堵了怎么办?
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原文由 ruby70303(ruby70303) 发表:
如果使用的过程中,柱子堵了怎么办?


使用的过程中怎么会堵呢?
一般是上样的样品没处理好,然后堵的吧?
要是柱头堵了,搅一搅吧(影响分离效果)~
要是中间堵了(不太可能啊),重装吧~
阿宝
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楼主说的这个填料是不是应用在 GFC中的?不是GPC吧?
凝胶柱子 很娇气
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2010/10/2 15:37:57 Last edit by xiaodu2007693
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原文由 环烯醚萜(kaikaifeng) 发表:
原文由 ruby70303(ruby70303) 发表:
如果使用的过程中,柱子堵了怎么办?


使用的过程中怎么会堵呢?
一般是上样的样品没处理好,然后堵的吧?
要是柱头堵了,搅一搅吧(影响分离效果)~
要是中间堵了(不太可能啊),重装吧~
呵呵,假如堵了了,和你样品有关,,我就遇到这种情况,没办法,只有洗掉,重新上
该帖子作者被版主 kaikaifeng1积分, 2经验,加分理由:如果是因为样品析出堵了,可以用毛巾热敷
19861005
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还有我见过用氯仿跑柱子的,效果不错,还用过丙酮撒
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19861005
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原文由 19861005(19861005) 发表:
还有我见过用氯仿跑柱子的,效果不错,还用过丙酮撒


用氯仿?填料都得浮起来~
再说了,何必单纯选用氯仿?
完全没有必要~
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原文由 19861005(19861005) 发表:
分离原理还有一个,吸附原理,不要忘掉这一个撒


凝胶的吸附原理?
目前为止,我是没有听说,也没有看过相关资料~
也有可能是提得少,用它的吸附原理来分离纯化?不清楚~
可能我见识太少了吧,呵呵~
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2010/10/2 14:24:12 Last edit by kaikaifeng
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原文由 阿宝(lpr20) 发表:
楼主说的这个填料时不时应用在 GFC中的?不是GPC吧?
凝胶柱子 很娇气


第一句话,没有很看懂~
能不能详细说说?谢谢~
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