主题：【分享】艾绒的化学成分研究

艾绒是由菊科蒿属植物艾Artemisia argyi H. Lév. & Vaniot的干燥叶经反复捶打而得，是灸法中应用较广的首要灸材[1]。艾灸是一种通过燃烧艾绒来调节气血、疏通经络的疗法，具有抗炎、抗肿瘤和抗菌等作用，广泛用于治疗类风湿性关节、月经不调和跌打损伤等症状[2]。本研究对艾绒醋酸乙酯提取物中化学成分进行研究，分离得到13个化合物，分别鉴定为 (4S,5S)-5-[(R)-5'-hydroxy-2'-methyl-3'-oxocyclopent-1'-en-1'-yl]-3-methylene-4-(3-oxobutyl) dihydrofuran-2(3H)-one（1）、iso-seco-tanapartholide（2）、3-methoxy-tanapartholide（3）、3-acetyl-iso-seco-tanapartholide（4）、甲基条叶蓟素（cirsilineol，5）、圣草酚（eriodictyol，6）、泽兰黄素（nepetin，7）、半齿泽兰素（eupatorn，8）、茵陈色原酮（capillarisin，9）、矢车菊黄素（centaureidin，10）、柚皮素（naringenin，11）、高圣草酚（homoeriodictyol，12）、异泽兰黄素（eupatilin，13）。化合物1～4为倍半萜类化合物，化合物5～8、10～13为黄酮类化合物，化合物9为色原酮类化合物，其中化合物1为新化合物，化合物4为首次从菊科植物中分离得到。利用脂多糖（lipopolysaccharide，LPS）诱导的小鼠巨噬细胞RAW264.7建立体外炎症模型，评价化合物1的抗炎活性。结果表明，化合物1能显著降低LPS诱导的RAW264.7细胞中NO的释放量，具有较好的抗炎活性。

1 仪器与材料
Bruker AVANCE 500型核磁共振波谱仪（德国Bruker公司）；SGW X-4B型熔点仪（上海仪电物理光学仪器有限公司）；Autopol VI型旋光仪（大昌华嘉商业有限公司）；LC-52型高压制备液相色谱仪（赛普锐思北京科技有限公司）；YMC-Pack ODS-A液相色谱柱（AA12S05-2510WT，250 mm×10 mm, S-5 μm, 12 nm）、ODS-A-HG反相C18填料、ZF-20D型暗紫外分光仪（日本YMC公司）；CA-1116A型冷却水循环装置、N-1300型旋转蒸发仪、OSB-2200型油浴锅、NVP-2000型隔膜真空泵（上海爱朗仪器有限公司）；柱色谱所用100～200目硅胶、TLC硅胶薄层板（青岛海洋化工有限公司）；MCI Gel CHP 20P（日本三菱化学公司）；Sephadex LH-20（瑞典Parmacia Biotech公司）。甲醇、乙腈（色谱纯），二氯甲烷、甲醇、醋酸乙酯、石油醚（分析纯）（天津市富宇精细化工有限公司）；水为超纯水。
艾绒样品（精细度为8∶1）由南阳华康艾制品有限公司提供，经河南中医药大学药学院郭涛教授鉴定为来源于菊科蒿属植物艾A. argyi Lév. & Vaniot叶的加工品；留样标本（20220816-A）存放于河南中医药大学药学院河南省药食同源中药技术工程研究中心。
2 提取与分离
取10 kg艾绒选用醋酸乙酯冷浸提取2次，每次7 d，将提取液减压浓缩得462.5 g浸膏，总提物经硅胶柱色谱分离，依次用石油醚-醋酸乙酯（30∶1～3∶1）、二氯甲烷-甲醇（20∶1～3∶1）梯度洗脱，得到12个组分Fr. 1～12。
将Fr. 10经MCI柱色谱，甲醇-水（30%、50%、70%、100%）混合溶剂梯度洗脱，得到6个亚组分Fr. 10-1～10.6，将亚组分Fr. 10-1经HW-40柱色谱，甲醇-水（水、10%、20%、30%、50%、100%）混合溶剂梯度洗脱得Fr. 10-1-1～10-1-11。Fr. 10-1-11经半制备高效液相色谱，甲醇-水（20∶80，2 mL/min）洗脱，得到化合物1（14.6 mg，tR＝22.0 min）。Fr. 10-1-10经半制备高效液相色谱，甲醇-水（38∶62，2 mL/min）得到化合物2（54.5 mg，tR＝32.2 min）。将组分Fr. 10-1-5经ODS柱色谱，甲醇- 水（水、30%、40%、45%、100%）混合溶剂梯度洗脱得Fr. 10-1-5-1～10-1-5-3。Fr. 10-1-5-1经半制备高效液相色谱，甲醇-水（25∶75，2 mL/min）得到化合物3（41.9 mg，tR＝53.4 min）。Fr. 10-1-5-3经半制备高效液相色谱，甲醇-水（40∶60，2 mL/min）得到化合物4（24.4 mg，tR＝22.1 min）。亚组分Fr. 10-5经Sephadex LH-20柱色谱分离，纯甲醇等度洗脱，得到化合物5（28.5 mg）。亚组分Fr. 10-3经Sephadex LH-20柱色谱分离，甲醇洗脱，得到Fr. 10-3-1～10-3-4，Fr. 10-3-4经半制备高效液相色谱，甲醇-水（45∶55，3 mL/min）得到化合物6（3.0 mg，tR＝25.1 min）和7（4.5 mg，tR＝43.7 min）。
将Fr. 9经ODS柱色谱，甲醇-水（10%、30%、60%、80%、100%）梯度洗脱得Fr. 9-1～9-5。亚组分Fr. 9-1析出黄色粉末，反复重结晶得到化合物8（75.7 mg）。亚组分Fr. 9-3经Sephadex LH-20柱色谱分离，甲醇洗脱，得到Fr. 9-3-1～9-3-3。Fr. 9-3-2经半制备高效液相色谱，甲醇-水（55∶45，3 mL/min）洗脱得到化合物9（2.7 mg，tR＝27.2 min）和10（2.2 mg，tR＝34.5 min）。Fr. 9-3-3经半制备高效液相色谱，甲醇-水（50∶50，3 mL/min）得到化合物11（7.4 mg，tR＝80.8 min）和12（6.5 mg，tR＝91.3 min）。亚组分Fr. 9-4经Sephadex LH-20柱色谱分离，甲醇洗脱，得到化合物13（77.4 mg）。
3 结构鉴定
化合物1：白色粉末（甲醇）。UV显示最大吸收波长为203、208、212 nm，[α]20 D+3.0° (c 0.04, CD3OD)，HR-ESI-MS谱给出准分子离子峰m/z 277.108 6 [M－H]?,（计算值为277.108 1），确定其分子式为C15H18O5，不饱和度为7。13C-NMR谱显示15个碳信号（表1），结合DEPT-135和HSQC谱，提示结构中具有2个甲基信号，4个亚甲基信号 [δC 122.0 (C-13) 为烯烃碳信号]，3个次甲基信号 [δC 75.9 (C-6) 和71.4 (C-1) 连氧次甲基信号]，6个季碳信号 [δC 208.5 (C-10), 204.8 (C-3) 为羰基信号，δC 173.4 (C-12) 为内酯羰基信号，δC 175.5 (C-5), 136.6 (C-4), 138.1 (C-11)为烯烃季碳信号]，δC 175.5为典型的α, β-不饱和酮信号。1H-NMR高场区显示2个甲基信号，连氧区出现内酯氢信号 [δH 4.70 (1H, d, J= 6.0 Hz, H-6)]，δH 5.66 (1H, d, J = 2.5 Hz), 6.32 (1H, d, J = 3.0 Hz) 为化合物的末端烯烃质子信号（H-13），为典型的α,β-不饱和内酯。1H-1H COSY谱（图1）显示出H-6/H-7/H-8/H-9、H-13/H-7之间的相关；结合HMBC谱显示，H-13/C-11和C-12相关，H-6/C-4、C-12和C-5相关，H-1/C-3、C-4和C-5相关，H-7/C-12和C-13相关，H-2/C-1、C-3、C-4、C-5相关，H-9/C-7、C-8和C-10相关，H-15/C-3、C-4、C-6相关，H-14/C-9和C-10相关。在NOESY谱（图1）中，H-13a/H-6/H-1存在明显相关，表明其位于同侧；H-13b/H-7存在明显相关，表明其位于同侧。使用PCM模型在甲醇溶剂中分别针对化合物1可能的绝对构型在B3LYP/6-31g(d, p)计算水平上得到计算的ECD谱图（图2），经过与实验ECD谱图比对，确定化合物1的绝对构型为1R,6S,7S。与文献报道[3]中的已知化合物tanaphallin的数据比对，它们具有相同的平面结构，但在C-1的立体化学上有所不同。查阅Scifinder数据库确定为新化合物，命名为1R-tanaphillin。

化合物2：黄色油状物（甲醇）。1H-NMR (500 MHz, CD3OD) δ: 6.24 (1H, d, J = 2.5 Hz, H-13a), 5.74(1H, d, J = 2.5 Hz, H-13b), 5.05 (1H, d, J = 5.5 Hz, H-6), 4.48 (1H, d, J = 5.0 Hz, H-3), 3.15 (1H, m, H-7), 2.77 (1H, dd, J = 18.5, 6.5 Hz, H-2a), 2.57 (2H, m, H-9a, 9b), 2.30 (1H, dd, J = 18.0, 1.5 Hz, H-2b), 2.19 (3H, s, H-14), 2.12 (3H, s, H-15), 1.97 (1H, m, H-8a), 1.83 (1H, m, H-8b)；13C-NMR (125 MHz, CD3OD) δ: 210.3 (C-10), 205.5 (C-1), 176.1 (C-5), 172.1 (C-12), 140.6 (C-11), 137.9 (C-4), 122.7 (C-13), 77.6 (C-6), 71.8 (C-3), 45.2 (C-2), 43.5 (C-7), 40.4 (C-9), 29.8 (C-14), 28.5 (C-8), 13.8 (C-15)。以上数据与文献报道基本一致[4]，故鉴定化合物2为iso-seco-tanapartholide。
化合物3：黄色油状物（甲醇）。1H-NMR (500 MHz, CD3OD) δ: 6. 24 (1H, d, J = 3.0 Hz, H-13a), 5.74 (1H, d, J = 2.5 Hz, H-13b), 5.06 (1H, d, J = 5.0 Hz, H-6), 4.43 (1H, d, J = 5.0 Hz, H-3), 3.42 (3H, s, 3-OCH3), 3.15 (1H, dd, J = 10.5, 2.5 Hz, H-7), 2.70 (1H, dd, J = 18.0, 6.0 Hz, H-2a), 2.56 (2H, m, H-9a, 9b), 2.30 (1H, dd, J = 18.0 Hz, 1.5 Hz, H-2b), 2.17 (3H, s, H-14), 2.12 (3H, s, H-15), 1.98 (1H, td, J = 14.0, 4.5 Hz, H-8a), 1.83 (1H, td, J = 14.5, 6.5 Hz, H-8b)；13C-NMR (125 MHz, CD3OD) δ:210.3 (C-1), 204.9 (C-10), 173.8 (C-4), 172.0 (C-12), 140.5 (C-5), 138.9 (C-11), 122.8 (C-13), 80.7 (C-3), 77.5 (C-6), 57.8 (3-OCH3), 43.5 (C-7), 41.8 (C-2), 40.4 (C-9), 29.8 (C-14), 28.4 (C-8), 14.1 (C-15)。以上数据与文献报道基本一致[5]，故鉴定化合物3为3-methoxy-tanapartholide。
化合物4：白色簇晶（甲醇），mp 86～89 ℃。1H-NMR (500 MHz, CD3OD) δ: 6. 26 (1H, d, J = 3.0 Hz, H-13a), 5.75 (1H, d, J = 2.5 Hz, H-13b), 5.72 (1H, d, J = 6.5 Hz, H-3), 5.09 (1H, d, J= 5.0 Hz, H-6), 3.18 (1H, m, H-7), 2.87 (1H, dd, J = 18.5, 2.0 Hz, H-2a), 2.59 (2H, m, H-9a, 9b), 2.30 (1H, dd, J = 18.5, 1.5 Hz, H-2b), 2.15 (3H, s, H-14), 2.13 (3H, s, 3-OAc), 2.11 (3H, s, H-15), 1.99 (1H, m, H-8a), 1.86 (1H, m, H-8b)；13C-NMR (125 MHz, CD3OD) δ:210.3 (C-1), 204.1 (C-10), 172.2 (3-OAc), 172.0 (C-12), 170.1 (C-4), 140.4 (C-5), 140.2 (C-11), 122.9 (C-13), 77.4 (C-3), 74.0 (C-6), 43.5 (C-7), 42.7 (C-2), 40.4 (C-9), 29.8 (C-14), 28.5 (C-8), 20.6 (3-OAc),14.1 (C-15)。以上数据与文献报道基本一致[6]，故鉴定化合物4为3-acetyl-iso-seco-tanapartholide。
化合物5：黄色针晶（吡啶），mp 145～147 ℃。1H-NMR (500 MHz, C5D5N) δ: 13.87 (1H, s, 5-OH), 7.68 (1H, d, J = 8.5 Hz, H-6′), 7.07 (1H, d, J = 8.5 Hz, H-5′), 7.00 (1H, d, J = 1.5 Hz, H-3), 6.94 (1H, d, J = 1.5 Hz, H-8), 3.98 (3H, s, 3′-OCH3), 3.85 (3H, s, 7-OCH3), 3.82 (3H, s, 6-OCH3)；13C-NMR (125 MHz, C5D5N)δ: 183.6 (C-4), 164.6 (C-2), 159.3 (C-9), 154.6 (C-7), 154.2 (C-5), 153.9 (C-4′), 150.6 (C-3′), 133.1 (C-6), 124.7 (C-1′), 121.1 (C-2′), 110.5 (C-5′, 6′), 105.8 (C-10), 104.8 (C-3), 95.8 (C-8), 60.7 (6-OCH3), 56.5 (3′-OCH3), 56.3 (7-OCH3)。以上数据与文献报道基本一致[7]，故鉴定化合物5为甲基条叶蓟素。
化合物6：棕黄色粉末（甲醇）。1H-NMR (500 MHz, CD3OD) δ: 6.91 (1H, d, J = 8.5 Hz, H-2′), 6.78 (2H, s, H-5′, 6′), 5.89 (1H, s, H-8), 5.88 (1H, s, H-6), 5.27 (1H, dd, J = 12.5, 3.0 Hz, H-2), 3.05 (1H, dd, J = 17.5, 12.5 Hz, H-3a), 2.70 (1H, dd, J = 17.5, 13.0 Hz, H-3b)；13C-NMR (125 MHz, CD3OD) δ:197.6 (C-4), 168.9 (C-7), 164.8 (C-5, C-9), 146.8 (C-4′), 146.5 (C-3′), 131.8 (C-1′), 119.2 (C-6′), 116.2 (C-5′), 114.7 (C-2′), 103.2 (C-10), 96.3 (C-8), 80.4 (C-2), 44.1 (C-3)。以上数据与文献报道基本一致[8]，故鉴定化合物6为圣草酚。
化合物7：黄色油状物（甲醇）。1H-NMR (500 MHz, CD3OD) δ: 7.37 (1H, d, J = 6.5 Hz, H-6′), 7.10 (1H, d, J = 11.0 Hz, H-5′), 6.55 (1H, s, H-8), 6.53 (1H, s, H-3), 3.87 (3H, s, 6-OCH3)；13C-NMR (125 MHz, CD3OD) δ: 184.2 (C-4), 166.4 (C-2), 158.9 (C-6), 154.6 (C-4), 153.9 (C-8), 151.0 (C-4'), 147.0 (C-3'), 132.9 (C-5'), 123.7 (C-1'), 120.3 ( C-6'), 116.7 ( C-5'), 114.1 (C-2'), 105.7 (C-8), 103.4 (C-3), 95.2 (C-7), 60.9 (OCH3-6)。以上数据与文献报道基本一致[9]，故鉴定化合物7为泽兰黄素。
化合物8：黄色砂晶（二氯甲烷），mp 196～198 ℃。1H-NMR (500 MHz, CDCl3) δ:13.05 (1H, s, 5-OH), 7.52 (1H, dd, J= 8.5, 2.0 Hz, H-6′), 7.33 (1H, d, J = 2.0 Hz, H-2′), 6.97 (1H, d, J = 8.5 Hz, H-5′), 6.59 (1H, s, H-8), 6.57 (1H, s, H-3), 4.04 (3H, s, 6-OCH3), 3.97 (3H, s, 7-OCH3), 3.95 (3H, s, 4′-OCH3)；13C-NMR (126 MHz, CDCl3) δ: 183.0 (C-4), 164.2 (C-2), 153.3 (C-7), 152.4 (C-5), 152.2 (C-9), 152.0 (C-4′), 149.4 (C-3′), 130.2 (C-6), 123.8 (C-1′), 120.2 (C-6′), 111.3 (C-2′, 5′), 108.9 (C-10), 104.1 (C-3), 93.5 (C-8), 60.8 (6-OCH3), 56.2 (4′, 7-OCH3)。以上数据与文献报道基本一致[10]，故鉴定化合物8为半齿泽兰素。
化合物9：黄色针晶（甲醇），mp 203～208 ℃。1H-NMR (500 MHz, CD3OD) δ:7.10 (2H, d, J = 8.5 Hz, H-2′, 6′), 6.89 (2H, d, J = 8.5 Hz, H-3′, 5′), 6.42 (1H, s, H-8), 5.12 (1H, s, H-3), 3.85 (3H, s, 6-OCH3)；13C-NMR (125 MHz, CD3OD) δ: 185.8 (C-4), 170.2 (C-2), 158.3 (C-9), 157.6 (C-4'), 154.2 (C-7), 152.1 (C-5), 145.1 (C-1'), 133.2 (C-6), 122.8 (C-2', 6'), 117.6 (C-3', 5'), 103.9 (C-10), 95.2 (C-8), 87.6 (C-3), 60.9 (6-OCH3)。以上数据与文献报道基本一致[11]，故鉴定化合物9为茵陈色原酮。
化合物10：黄色粉末（甲醇）。1H-NMR (500 MHz, CD3OD) δ: 7.71 (1H, s, H-6′), 7.65 (1H, d, J = 8.5 Hz, H-2′), 6.94 (1H, d, J = 8.5 Hz, H-5′), 6.52 (1H, s, H-8), 3.93 (3H, s, 4′-OCH3), 3.88 (3H, s, 6-OCH3), 3.80 (3H, s, 3-OCH3)；13C-NMR (125 MHz, CD3OD) δ:180.2 (C-4), 158.9 (C-7), 157.9 (C-2), 153.8 (C-9), 151.1 (C-4′, 5), 148.9 (C-3′), 139.3 (C-3), 132.6 (C-6), 123.7 (C-1′), 122.8 (C-6′), 116.4 (C-2′), 112.8 (C-5′), 101.4 (C-10), 95.1 (C-8), 60.9 (6-OCH3), 60.6 (3-OCH3), 56.5 (4′-OCH3)。以上数据与文献报道基本一致[12]，故鉴定化合物10为矢车菊黄素。
化合物11：黄色粉末（甲醇）。1H-NMR (500 MHz, CD3OD) δ: 7.31 (1H, d, J = 8.5 Hz, H-6′), 7.31 (1H, d, J= 8.5 Hz, H-2′), 6.88 (1H, d, J = 8.0 Hz, H-5′), 6.88 (1H, d, J = 8.0 Hz, H-3′), 5.89 (1H, s, H-8) , 5.89 (1H, s, H-6), 5.34 (1H, dd, J = 12.5, 3.0 Hz, H-2), 3.11 (1H, dd, J = 17.5, 13.0 Hz, H-3), 2.67 (1H, dd, J = 17.5, 13.0 Hz, H-3)；13C-NMR (125 MHz, CD3OD) δ: 197.7 (C-4), 165.4 (C-7), 164.8 (C-5, C-9), 159.0 (C-4′), 131.1 (C-6′), 129.0 (C-2′), 116.3 (C-3′), 116.1 (C-5′), 103.3 (C-10), 97.0 (C-8), 96.1 (C-6), 80.4 (C-2), 44.0 (C-3)。以上数据与文献报道基本一致[13]，故鉴定化合物11为柚皮素。
化合物12：淡黄色结晶（甲醇），mp 223～226 ℃。1H-NMR (500 MHz, CD3OD) δ:7.07 (1H, d, J = 1.5 Hz, H-2′), 6.92 (1H, dd, J = 8.0, 2.0 Hz, H-6′), 6.82 (1H, d, J = 8.0 Hz, H-5′), 5.90 (1H, s, H-8), 5.88 (1H, d, J = 1.5 Hz, H-6), 5.34 (1H, dd, J = 13.0, 3.0 Hz, H-2), 3.80 (3H, s, 3′-OCH3), 3.14 (1H, dd, J = 17.0, 13.0 Hz, H-3), 2.70 (1H, dd, J = 17.0, 3.0 Hz, H-3)；13C-NMR (125 MHz, CD3OD) δ:197.7 (C-4), 168.4 (C-7), 164.8 (C-5, C-9), 149.1 (C-4′), 148.1 (C-3′), 131.7 (C-1′), 120.5 (C-6′), 116.1 (C-5′), 111.2 (C-2′), 103.3 (C-10), 97.1 (C-6), 96.2 (C-8), 80.6 (C-2), 56.4 (C-6), 44.1 (5′-OCH3)。以上数据与文献报道基本一致[13]，故鉴定化合物12为高圣草酚。
化合物13：黄色粉末（DMSO）。1H-NMR (500 MHz, DMSO-d6) δ: 13.01 (1H, s, 5-OH), 7.51 (1H, d,  J = 8.5 Hz, H-6′), 7.41 (1H, s, H-2′), 6.97 (1H, d, J = 8.5 Hz, H-5′), 6.79 (1H, s, H-8), 6.52 (1H, s, H-3), 3.83 (3H, s, 4′-OCH3), 3.80 (3H, s, 3′-OCH3), 3.76 (3H, s, 6-OCH3)；13C-NMR (125 MHz, DMSO-d6) δ:182.1 (C-4), 163.2 (C-2), 157.2 (C-7), 152.7 (C-5), 152.4 (C-9), 152.0 (C-4'), 148.9 (C-3'), 131.3 (C-6), 122.8 (C-1'), 119.8 (C-6'), 111.4 (C-5'), 109.1 (C-2'), 104.1 (C-10), 103.2 (C-3), 94.3 (C-8), 59.9 (6-OCH3), 55.7 (4′-OCH3), 55.6 (3′-OCH3)。以上数据与文献报道基本一致[14]，故鉴定化合物13为异泽兰黄素。
4 体外抗炎活性评价
由于化合物2～13的抗炎活性已被报道[4,15-22]，故本研究只对新化合物1进行体外抗炎活性筛选。
本实验参照文献方法[23]展开研究。首先用浓度为2、5、10、20、30、40 μmol/L的化合物1刺激RAW 264.7细胞，培养24 h后采用MTT法检测细胞活力；然后在无显著毒性浓度范围内，采用Griess试剂法来检测化合物1对LPS诱导的RAW 264.7细胞中NO释放量的影响，用以评价其体外抗炎活性。实验取对数生长的RAW 264.7细胞以密度1×104个/孔接种于96孔板中，于37℃、5%CO2培养箱中培养24 h，弃上清。将细胞分为空白对照（空白培养基）、模型组（2.0 μg/mL LPS）、样品组（2.0 μg/mL LPS＋2、5、10、20、30、40 μmol/L样品），吸取上清液，将样品以50 μL/孔加至96孔板中，再加入Griess Reagent Ⅰ和Griess Reagent Ⅱ试剂，继续培养10 min后，于540 nm波长下测定吸光度（A）值，根据标准曲线计算样品中的NO浓度。
抑制率＝(A模型－A样品)/(A模型－A空白)
实验结果显示，化合物1在浓度2～40 μmol/L对RAW 264.7细胞无显著毒性，化合物1在2、5、10、20、30、40 μmol/L的抑制率分别为（5.02±4.34）%、（13.80±3.76）%、（30.11±2.17）%、（38.90±3.75）%、（48.93±3.55）%、（55.21±3.76）%，IC50值为（31.15±2.30）μmol/L，表明化合物1具有一定的抗炎活性。
5 讨论
本研究从艾绒醋酸乙酯提取物中分离鉴定了13个化合物，包括4个倍半萜类化合物（1～4）、8个黄酮类化合物（5～8、10～13）、1个色原酮类化合物（9）。其中化合物1为新化合物，化合物4为首次从菊科植物中分离得到。文献报道艾叶有显著的抗炎活性[24]，艾绒和艾叶的化学成分类型相似[25]。本研究从艾绒中分离鉴定的已知单体化合物也被报道有较好的抗炎活性[4,15-22]，故本研究仅对新化合物进行了体外抗炎活性评价。结果显示化合物1能够明显抑制LPS诱导的RAW 264.7细胞中NO生成量，且呈剂量相关性，表明化合物1具有抗炎活性。本研究丰富了天然产物的数据库，进一步加深对艾灸疗法的主要材料艾绒的认识，为艾绒进一步的开发利用提供了实验依据。

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