主题:【分享】欧盟兽药检测方法(之十)

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放射免疫法(RIA)测定动物组织中玉米赤霉醇的残留物(EEC ,筛选法)

Method For Measurement Of Residues Of Zeranol In Animal Tissure By Radioimmunoassy (EEC, Cy 1.6 Screening Method)


1. 引言
欧盟各国禁止在动物源食品中使用玉米赤霉醇,对进口的和欧盟成员国生产的动物产品中玉米赤霉醇的残留量规定为零。

2. 应用范围
本分析方法描述了食品和动物源样品中玉米赤霉醇总量的测定。本法适用于肉、鱼和生物材料如动物器官、生物体液和粪便。按空白样品测定的标准差三倍计,玉米赤酶醇的检测限为0.1 - 1 g/kg或0.1 - 1 g/L。

3. 参考文献
Commission Decision,93/256/EEC,laying down the methods for detecting residues of substances having a hormonal or thyrostatic action.〔OJ. №L.118, 14.4.93. pp 64-74〕

2052/VI/84-EN File 6.21 Ⅱ-4, Scientific Veterinary Committee, Working Group – “Reference Methods for Residues ”, General Criteria for the establishment of reference Methods for the Detection of Residues.

ISO Standard 78/2-1982 Layout for standards – Part 2:standard for Chemical Analysis

Methods based on modifications of methods described by:-

Dixon, S.N. and Russel, K.L.(1983), Radioimmunoassay of the anabolic agent zeranol.Ⅱ. Zeranol concentrations in the urine of sheep and cattle implanted with zeranol (Ralgro). J.Vet. Pharmacol. Therap. 6.173-179.

Dixon,S.N. and Mallinson, C,B.(1986) ,Radioimmunoassay of the anabolic agent zeranol.Ⅲ. Zeranol concentrations in the faeces of steers implanted with zeranol (Ralgro). J.Vet. Pharmacol. Therap. 9, 88-93.

Dixon, S.N. and Russel, K.L.(1986), Radioimmunoassay of the anabolic agent zeranol.Ⅳ. Zeranol concentrations in the tissues of sheep and cattle implanted with zeranol (Ralgro). J.Vet. Pharmacol. Therap. 9.94-100.

Determination of zeranol in bile by HPLC/RIA. (1989). Central Veterinary Laboratory, Surrey,KT15 3NB.

Other references:
Bates,M.L., Warwick, M.J. and Shearer, G. , (1985) Determination of synthetic growth promoters in bile. Food Add. Contaminants, 2, 37-46

Duchatel, J.P., (1985),Free and conjugated zeranol residues determined by radiommunoassay in urine and plasma of calves treated with Forplix. ANN. rech. Vet. 16, 93-97

4.定义
玉米赤霉醇含量是指按本法测得的样品中所含玉米赤霉醇的量,不管其化学形式如何。含量以 g/kg或 g/L表示。

5.方法提要
本法包括6/7个步骤
-- 组织样品在缓冲液中均质或生物体液用缓冲液稀释
-- 用酶对缓冲/均质液进行共轭水解
-- 有机溶剂提取玉米赤霉醇
-- Sep-Pak C18小柱(可选)净化
-- HPLC对玉米赤霉醇进一步净化
-- 最终用RIA测定
-- 采用标准曲线外推法计算玉米赤霉醇含量,并用玉米赤霉醇的回收率进行校正,特别是动物组织样品。

6.动物组织样品的提取试剂
引用的试剂可保证实验结果,其它来源试剂可相当。
6.1 用于所有动物组织
6.1.1 丙酮
6.1.2 干冰
6.1.3 乙醚(无过氧化物,高纯),甲基-叔丁醚可替代乙醚
6.1.4 重蒸馏水。
6.2 用于肝、肾、胆汁和尿液的试剂
6.2.1 磷酸缓冲液pH 7.0(如6.5.4)
6.2.2 β-葡萄糖苷酶(例如,),用10倍体积的重蒸馏水稀释。该酶工作在pH7.0
6.2.2.1 质量控制尿液或胆汁:取自使用玉米赤酶醇的牛。
6.2.2.2 质量控制尿或胆汁:取自未使用玉米赤酶醇的牛。
6.3 用于肌肉和粪便的试剂。
6.3.1 氯仿
6.3.2 1 mol/L NaOH.
6.3.3 90% HAc
6.3.4 甲醇
6.3.4.1 甲醇:水 = 60:40 (v/v)
6.3.4.2 甲醇:水 = 30:70 (v/v)
6.3.5质量控制粪便:取自使用玉米赤酶醇的牛。
6.4 用于测定肌肉、肝、肾和脂肪样品的试剂。
6.4.1 3H-玉米赤霉醇回收率溶液:将贮备液(6.5.6.1)蒸发并用缓冲液(6.5.4)重新溶解制得,临用前配制。
6.4.2 质量控制
6.4.2.1 质量控制1:肌肉,肝、肾和脂肪,取自未使用玉米赤霉醇的牛。
6.4.2.2 质量控制2:肌肉、肝、肾和脂肪,取自使用玉米赤霉醇的牛。
6.5 用于RIA操作的试剂。
6.5.1 标准玉米赤霉醇的甲醇溶液(6.3.4)贮存于4℃中

数量 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12
pg/0.1mL 0 25 50 75 100 150 200 300 400 600 800 1000

6.5.2 适宜与1.5 mL水溶液混合闪烁液,例如:4.5g, 2,5-二苯恶唑(PPO),(例如Hopkin/Williams闪烁级),500mL曲通X-114(例如Koch Light闪烁级), 1.5mL甲苯(6.5.9)。
6.5.3 活性炭悬浮液 - 5g活性炭(例如: Norit-A), 0.5g葡聚糖(例如Pharmacia T70)。用1升重蒸馏水配置。
6.5.4 磷酸盐-明胶缓冲液 - 4.68g无水NaH2PO4,8.66gNa2HPO4,9.0g NaCl ,0.1g thionersal (例如 BDH)或1.0g叠氮化钠,1.0g 明胶(例如 BDH),用重蒸溜水配置成1升溶液,贮存于4℃中。
6.5.5 玉米赤霉醇标准液制备。
6.5.6 3H-玉米赤霉醇溶液贮存于-20℃中。
6.5.6.1 用甲醇稀释溶液(6.5.6),使3H-玉米赤霉醇浓度为1 uCi/mL,-20oC中保存。
6.5.6.2 3H玉米赤霉醇测试液,通过对贮备液(6.5.6.1)的挥发,并用缓冲液(6.5.4)溶解。得到活度为10000 cpm/0.1mL。当天配制。
6.5.6.3 必需测定3H-玉米赤霉醇非特异性结合(NSB),如果超过3H-玉米赤霉醇总计数的10%,则必须再经纯化或更换。
6.5.7 玉米赤霉醇抗血清贮存于-20℃中(见13节)。
6.5.7.1 用缓冲液(6.5.4)配制抗体溶液(按照抗体配制说明操作),缓冲液中抗体的浓度应大于最终RIA保温混合物浓度(见9.5.2.1 - 9.5.2.3)的7倍。
6.5.8 硅化液
6.5.9甲苯

7.仪器设备
7.1液体闪烁计数仪,配有自动样品更换。
7.2匀质机 (Silverson型)
7.3冷藏空间
7.3.1冷藏室/冰箱空间。
7.3.2深度冷冻仪,-20℃
7.4通风橱
7.5离心机
7.5.1冷冻离心机
7.5.2台式离心机
7.6加热器
7.6.1 37℃水浴/保温箱
7.6.2 40℃/45℃水浴
7.6.3 110℃烘箱
7.7玻璃器皿
7.7.1试管75mm×16mm
7.7.2锥形离心管
7.7.3通用瓶,25mL带螺旋盖
7.7.4硅化试管(7.7.1)通过用硅化液浸润,然后在100℃烘箱中烘1小时硅化。
7.8闪烁瓶
7.9旋涡混合器
7.10移液器和配量器。
7.10.1半自动移液枪。
7.10.2巴氏移液管。
7.10.3斜度测量(乙醚,10mL和5mL)。
7.10.4用于闪烁剂配量器。
7.11具有吹氮和蒸发集管的蒸发仪。
7.11.1蒸发仪的冷却附件,保证蒸发温度不超过50℃。
7.12磁力搅拌器。
7.13量筒,25mL。
7.14 HPLC仪。参阅公司或产品资料,相当型号或产品均可。
7.14.1进样阀(Reodyue,7125型)配备0.25ml样品定量管。
7.14.2 HPLC泵 (Waters 510型或LKB 2150型)。
7.14.3 UV检测器,可变波长或波长为254或240nm (Waters 440型)。
7.14.4馏分收集器(LKB Redirac型),见注释2。
7.14.5 HPLC柱: Hypeosil ODS (150mm 4.6 mm I.D. 5 m)(Chrompack)或CP微珠C18 (100mm 4.6mm I.D. 3 m)(Chrompack)
7.14.6记录仪/打印机

8. 样品和采样步骤
注意事项见6.3.1节和ISO文件78/2-1982。下面注释源于2052/VI/84-EN的附录II。
8.1样品性质:样品应符合64/433/EEC指令所规定的测定肉中残留物的要求。生物体液或粪便也可作为
残留物检测的样品。
8.2样品数量:样品数量必须满足本法测试以及重复分析所需的量。本法样品数量不得少于:
肉、肝、肾、脂肪,20g;粪便,10g;血液,20mL;尿液,5mL;胆汁,1mL
8.3样品取样和包装必须适合在实验室能清楚的识别。
8.4包装,保存和运输必须保持样品的完整性,不能对检测结果产生不利影响。
玉米赤霉醇的样品在保存和运输中温度应低于-18℃。

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9.操作步骤
9.1提取步骤
[注意:样品回收率测定时:3H-玉米赤霉醇在提取样品前加入,然后用RIA测定提取液中的回收率。]
9.1.1尿液和胆汁
本法测得的玉米赤霉醇为样品的总浓度。试样中共轭态的玉米赤霉醇通过水解成游离型,然后提取至乙醚中。提取液由HPLC净化,随后RIA测定。
9.1.2在试剂瓶(7.7.3)中加入2.0mL重蒸馏水(6.1.4)和0.1mL 3H玉米赤霉醇回收液(6.4.1)。
9.1.2.1各加入0.1mL回收液(6.4.1)至2个闪烁瓶中(7.8)。
9.1.3加入0.05mL胆汁或尿液(如果玉米赤霉醇浓度很高,减量加入。所有样品平行测试2次)。
9.1.4另取2个试剂瓶(9.1.2)各加入0.05mL质控尿液或胆汁(6.2.3.1或6.2.3.2)。
9.1.5两个试剂瓶(9.1.2)作为溶剂空白。
9.1.6各加100 L酶(6.2.2)于上述试剂瓶(9.1.3 – 9.1.5)中, 在37℃中培养2h。
9.1.7冷却后加入5mL乙醚(6.1.3),振荡15秒。
9.1.8在干冰/丙酮浴中(6.1.1,6.1.2)冷冻样品,醚相转移至玻璃试管中。
9.1.9蒸发至干(7.11.1)。
9.1.10 HPLC步骤。
9.1.10.1用0.25mL甲醇/水(30:70,V/V)溶解残渣。
9.1.10.2溶解提取物(9.1.10.1)经HPLC净化。
9.1.10.3 甲醇/水(60:40,V/V)作流动相,流速1 - 2 mL/min。
9.1.10.4 收集保留时间为5 min前后的馏分。在提取液(9.1.10.1)进样前,应预先测定玉米赤霉醇及相关化合物的保留时间。玉米赤霉醇与相关化合物应完全分离。
HPLC注意事项:
1.对组织提取物,先经Sep-Pak C18小柱净化,再用HPLC净化,这样可保护HPLC柱。
2.馏分可手动收集,或通过自进样至馏分收集器的电脉冲进行收集。
9.1.10.5 将单馏分收集的溶剂挥发。
9.1.11 加1.0 mL缓冲液(6.5.4),旋涡混匀。
9.1.12 按9.3.17 - 9.3.21步骤进行。
9.2 粪便
方法原理是用乙醚从粪便中提取游离的玉米赤霉醇,醚提取物再经液-液分离,纯化,RIA测定。
9.2.1 分别称取两份1g粪便样于试剂瓶中(7.7.3)。
9.2.2 称取两份1g质控粪样(6.3.5)于通用瓶中。
9.2.3 各加5 mL 水于2个通用瓶和试剂瓶(9.2.1和9.2.2)中。
9.2.4 各加0.1 mL玉米赤霉醇回收液(4.1)于通用瓶(9.2.1,9.2.2和9.2.3)中,旋涡混匀15s。
9.2.4.1 各加0.1 mL玉米赤霉醇于两个闪烁瓶(7.8)中。
9.2.5 加10 mL 乙醚,旋涡混匀15s。在2000 - 3000 rpm离心10min。
9.2.6 在干冰/丙酮浴(6.1.1,6.1.2)中冷冻试剂瓶,醚相转移至玻璃锥形离心管(7.7.2)中。
9.2.7 融化水相,重复9.2.5和9.2.6步骤。
9.2.8 合并乙醚相,挥发至干(7.11.1)。
9.2.9 残留物用1 mL氯仿(6.3.1)溶解。
9.2.10 用1 3 mL 1M NaOH(6.3.2)溶液抽取氯仿中的玉米赤霉醇.旋涡混匀15s。在1000 rpm离心10 min。吸取上层NaOH相至通用瓶(7.7.3)中。
9.2.11 重复9.2.10步骤。
9.2.12 合并NaOH提取液,用0.6 mL 90% HAc(6.3.3)酸化。
9.2.13 用1 10 mL乙醚抽提水相中玉米赤霉醇。在干冰/丙酮浴(9.2.6)中通过冰冻分离醚相。如有需要,在冰冻前可适当旋涡混匀和离心。
9.2.14 合并乙醚提取物,挥发至干 。
9.2.15 HPLC步骤(见9.1.10 - 9.1.10.5)。
9.2.16 加1 mL甲醇(6.3.4)将残留物溶解。
9.2.16.1 移取0.2 mL至闪烁瓶中(7.8)中,回收测定按9.3.16 - 9.3.18步骤。
9.2.17 配制1/50 - 1/10样品,用作RIA测定。
9.2.17.1 移取0.1mL甲醇提取物(9.2.15)至硅化的玻璃试管(7.7.4)中,氮气流下吹干。加0.5 mL缓冲液(6.5.4),进行RIA步骤(9.5.1 - 9.5.10)。
9.3 肉、肝、肾
本法基于醚对肉提取纯化,再经液-液分离,HPLC 净化。肝和肾在提取前需要增加水解步骤。
9.3.1 称取1g剁碎的组织样于通用瓶中(7.7.3)中。
9.3.2 加2 mL水,匀浆(7.2)。
9.3.3 用质控动物组织(6.4.2.1 - 2)重复步骤9.3.1 - 9.3.4。
9.3.4 加2 mL水于两个试剂瓶中,作为容剂空白。
9.3.5 分别加0.1 mL 3H-玉米赤霉醇液(6.4.1)于试剂瓶步骤(9.3.2,9.3.3)中和两个闪烁瓶(7.8)中,均匀。
9.3.6 对肝和肾样品,加0.1 mL酶(6.2.2)至上述各试剂瓶中,37℃保温2h。
9.3.7 加10 mL乙醚,旋涡混匀30s。在2000 - 3000 rpm(18℃)离心。
9.3.7.1 在干冰/丙酮浴(6.1.1,6.1.2)中冷冻通用瓶,醚相转移至玻璃锥形离心管中(7.7.2)
9.3.8 融化水相,加5 mL乙醚,按9.3.7步骤重复提取。
9.3.9 合并提取液,挥发至干(7.11.1)。
9.3.10 加1 mL氯仿(6.3.1)溶解残渣。
9.3.11 用1 3 mL 1 moL/L NaOH(6.3.2)抽提玉米赤霉醇(旋涡混匀30s,在1000rpm(18℃)离心10 min)。
9.3.12 将NaOH抽提液转移至含有250 L 90% HAc(6.3.3)的试剂瓶(7.7.2)中。
9.3.13 用5 mL乙醚抽取玉米赤酶醇(振荡,离心)。在干冰/丙酮浴中冷冻试剂瓶,醚相转移至玻璃锥形离心管中。
9.3.14 挥发至干(7.11.1)。
9.3.15 HPLC步骤(9.1.10 - 9.1.10.5)
9.3.16 加1 mL明胶-磷酸盐缓冲液(6.5.4),振荡30s。
9.3.17 吸取0.25 mL溶液(9.3.17)至闪烁瓶(7.8)中。
9.3.18 各加10 mL闪烁液至闪烁瓶(9.3.17)中和两个含有回收液的闪烁瓶中(见9.3.5, 9.2.4.1和9.1.2.1)。
9.3.19 各加10 mL闪烁液至两个含有明胶-磷酸盐缓冲液的闪烁瓶(7.8)中,用作背景计数。
9.3.20 用 -闪烁计数仪(7.1)对被测试样(9.3.18和9.3.19)计数20 min。
9.3.21 吸取0.5 mL 样液(9.3.16)至硅化试管(7.7.4)中,进行RIA步骤(见9.5.1 - 9.5.10)
9.4 脂肪。
9.4.1 称取1g剁碎脂肪于通用瓶(7.7.3)中。
9.4.2 加2 mL蒸馏水(6.1.4)。
9.4.3 将质控脂肪(6.4.2.1.2)重复步骤9.4.1 - 9.4.2。
9.4.4 加0.1 mL 3H玉米赤霉醇液(6.4.1)至通用瓶(9.4.2, 9.4.3)中。
9.4.5 各加10 mL 乙醚于试剂瓶(9.4.2和9.4.3)中,振荡1 min.。
9.4.6 在11000g离心10 min。用冷冻仪(7.3.2)在-18℃下将两相分离。
9.4.7 醚相转移至玻璃试管(7.7.2)中。
9.4.8 加5 mL乙醚于所有试剂瓶中,重复提取(9.4.5,9.4.6) 。
9.4.9 合并提取液,挥发至干(7.11.1) 。
9.4.10 加2 mL氯仿(6.3.1)溶解残渣。
9.4.11 按步骤9.3.10起进行。
9.5 放射免疫分析步骤
本法利用活性炭,选择分离结合和游离的抗体。RIA步骤适用于所有组织提取物,包括胆汁、尿液、粪便、肉、肝、肾和脂肪。
9.5.1 吸取0.1 mL甲醇于四个硅化的试管(7.7.4)中,吸取两份0.1 mL玉米赤霉醇标准液(6.5.1)于硅化的试管(7.7.4)中,每管为0-1000 pg间,甲醇挥发至干。例如,在氮气流下(7.11.1)。
9.5.2.1 加0.5 mL明胶-磷酸盐缓冲液(6.5.4)。
9.5.2.2 加0.1 mL 3H-玉米赤霉醇液(6.5.6.2)于样瓶(9.5.2.1)和测试样瓶(9.1.11, 9.2.16, 9.3.20)中。
9.5.2.3 在两个零标准管中加0.1 mL缓冲液(6.5.4),其它试管中各加0.1 mL抗体(6.5.7.1)
9.5.3 旋涡混匀数秒,41oC保温过夜。
9.5.4 4oC下,加入0.5 mL活性炭悬浮液(6.5.3)。
9.5.5 用手缓缓摇动试管。4 oC下静置10 min。
9.5.6 在2000 - 3000 rpm(4oC)离心10 min。
9.5.7 4oC下, 上清液转移至闪烁瓶(7.8)中。
9.5.8 加10 mL闪烁液(6.5.2)于所有瓶中,包括两个含有0.1 mL 3H-玉米赤霉醇液(6.5.6.2)和0.1 mL明胶-磷酸盐缓冲液(6.5.4)瓶中。
9.5.9 闪烁计数前,避光、静止20 min以上。
9.5.10 样品置于闪烁液计数仪(7.1)中计数(预设时间和计数)。例如10000计数或4 min。

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10. 结果计算
10.1 计算方法
绘制校正曲线,纵坐标为3H-玉米赤霉素醇的cpm数(含有标准品为0 - 1000 pg(见6.5.1)的结合抗体),横坐标为标准品的浓度pg。
[注释:两点校正值必须准确,即为回收液放射活性和玉米赤霉醇回收率放射活性]
10.2 cpm校正方程

结合点cpm 3H玉米赤霉醇cpm (T)
校正cpm = ----------------------------------------------------
3H玉米赤霉醇cpm (T) + N (回收率cpm - 背景cpm)

RIA样品的体积
N = --------------------------
回收率测定样品的体积

结合点cpm = 结合测试样的cpm
3H-玉米赤霉醇cpm (T) = cpm,用于RIA培养(见9.5.10),0.1 mL 3H-玉米赤霉醇液(6.5.6.2)
回收率cpm = cpm,0.25 mL测试样提取物(9.3.17)
cpm背景 = 背景cpm,(见9.3.19)
10.3 在校正曲线上读取测试样和溶液空白值。
10.4 计算样品中玉米赤霉醇浓度
1g肉,50 L胆汁和50 L尿液中玉米赤霉醇量(pg)

(曲线pg - 空白pg) (标准回收率 - 空白回收率)
pg = -----------------------------------------------------
N ( (回收率cpm - 背景cpm)

曲线pg = 步骤10.3得到的pg。
空白pg = 步骤10.3得到的溶液空白pg。
标准回收率= 0.1 mL 3H玉米赤霉醇回收率液(6.4.1)的cpm。
回收率cpm = 用于回收率测定(9.2.16.1,9.3.17)测试样提取物体积,cpm。
背景cpm = 背景cpm(9.3.19)。
10.5 替代计算。
B = 结合抗体cpm ---- 用于NSB(NSB管9.5.2.3)的cpm。
B0 = 零标准管中结合抗体cpm -- 用于NSB的cpm。B0应介于总cpm (3H玉米赤霉醇的cpm (T))(见10.2)的40 - 60%。
10.5.1 以B/B0对标准品浓度(pg)作图,得到校正曲线。
10.5.1.1 在有计算机程序条件下,可以绘制log标准品浓度(pg)对Ln Z/(1 - Z)曲线,其中Z = B/B0(LOGIT制图法),可作为插值结果。
10.5.2 用校正的cpm(见10.2)计算测试样和溶液空白的B/B0。从校正曲线中计算玉米赤霉醇的量(pg)。
10.5.3 按10.4步骤操作。
10.5.4 最终结果应包括原始数据。
10.6 精密度: 根据有关判定准则文件(89/610/EEC),用标准品来测定方法的精密度。

11 特殊事例
本法作为光谱法的替代方法

12 方法注意点
当测试出现阳性时,为确保结果的准确性,最好采用性质不同(例如极性不同)的其他色谱柱,再进行HPLC分析作进一步确证。

13. 质量控制、标准品、参考物质和抗体
标明标准品和主要试剂的来源和质量。
13.1 抗体按供应商提供的保存和稀释方法说明进行操作。
13.2 抗体来源
Laboratorie ditormonologie, C.E.R, Rue de Carmel, B-5406, Marloie, 比利时
Genego, Via Ressel S Andrea zona ind., 37470, Rorizia, 意大利

14. 测试报告
列出样品标记、采用的参考方法及结果,列出在测试过程中的独特之处以及会影响测定结果的某些操作步骤。

15. 缩略语(略)
一些重要缩写见第12部分附录1和第5部分(标准)。NSB为非特异性结合。

16. 检测流程图

组织 -------→ 加缓冲液 + 回收率标准 -------→ 均质

液体(尿、胆汁、血浆、血清) ↓

回缓冲液 + 回收率标准化 -------------------→ 水解


结果计算 ←----- RIA ←------ HPLC ←----- 有机溶剂提取

yuduoling
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