主题:【分享】一些农残检测方法

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戈壁明珠
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克菌丹、乙酯杀螨醇、百菌清和灭菌丹检测方法
1.分析目标化合物
农药等成分物质                                分析目标化合物
  克菌丹                                        克菌丹
  乙酯杀螨醇                                    乙酯杀螨醇
百菌清                                        百菌清
灭菌丹                                        灭菌丹

2.仪器设备
带电子捕获检测器的气相色谱仪气相色谱-质谱仪。
3.试剂
使用附录2所列试剂。
4.标准品
克菌丹:含克菌丹98%以上,熔点为173℃~175℃。
乙酯杀螨醇:含乙酯杀螨醇97%以上,熔点为35℃~39℃。
百菌清:含百菌清99%以上,熔点为250℃~251℃。
灭菌丹:含灭菌丹99%以上,熔点为177℃。
5.试验溶液的制备
a 提取方法
① 谷类、豆类和种子类
将样品粉碎通过420μm的标准网筛后,称取其10.0g,加入20mL 3%磷酸,放置2小时。
加入100mL丙酮,搅拌3分钟后,用涂布1cm厚硅藻土的滤纸抽滤于磨口减压浓缩器中。取出滤纸上的残留物,加入50mL丙酮,搅拌3分钟后,按上述同样操作,合并滤液于减压浓缩器中,40℃以下浓缩至约30mL。
将其移入预先装有100mL 10%氯化钠溶液的300mL分液漏斗中。用100mL正己烷洗涤上述减压浓缩器的茄型瓶,合并洗液与分液漏斗中。用振荡器激烈振荡5分钟后,静置,正己烷层移入300mL三角瓶中。水层中再加入50mL正己烷,按上述同样操作,合并正己烷于上述三角瓶中,加入适量无水硫酸钠,不时振荡、混匀,放置15分钟后,滤入磨口减压浓缩器中。再用20 mL正己烷洗涤三角瓶,以此洗涤液洗涤滤纸上的残留物,重复操作两次,合并两次洗涤液于减压浓缩器中,40℃以下除去正己烷。   
残留物中加入30mL正己烷,移入100mL分液漏斗中。加入30mL正己烷饱和乙腈,用振荡器激烈振荡5分钟后,静置,乙腈层移入磨口减压浓缩器中。正己烷层中加入30mL正己烷饱和乙腈,按上述同样操作,重复两次,合并乙腈层于减压浓缩器中,40℃以下除去乙腈。残留物中加入5mL正己烷溶解。
② 水果、蔬菜、末茶和啤酒花
水果和蔬菜:准确称取约1kg样品,加入500mL 10%磷酸溶液,搅碎混合均匀后,称取相当于20.0g样品的量。
末茶和啤酒花:称取5.00g样品, 加20mL 3%磷酸溶液,放置2小时。
加入100mL丙酮,搅拌3分钟后,用涂布1cm厚硅藻土的滤纸抽滤于磨口减压浓缩器中。取出滤纸上的残留物,加入50mL丙酮,搅拌3分钟后,按上述同样操作,合并滤液于减压浓缩器中,40℃以下浓缩至约30mL。
将其移入预先装有100mL 10%氯化钠溶液的300mL分液漏斗中。用100mL正己烷洗涤上述减压浓缩器的茄型瓶,合并洗液于上述分液漏斗中,用振荡器激烈振荡5分钟后,静置,正己烷层移入300mL三角瓶中。水层中再加入50mL正己烷,按上述同样操作,合并正己烷于上述三角瓶中。加入适量无水硫酸钠,不时振荡、混匀,放置15分钟后,滤入磨口减压浓缩器中。再用20mL正己烷洗涤三角瓶,以此洗涤液洗涤滤纸上的残留物,重复操作两次,合并两次滤洗涤液于减压浓缩器中,40℃以下除去正己烷。残留物中加入5mL正己烷溶解。
③末茶以外的茶
将9.00g样品浸泡于540mL 100℃水中,室温下放置5分钟,过滤,移取360mL冷却后的滤液于500 mL的三角瓶中。加入30mL磷酸、100 mL丙酮、2mL饱和乙酸铅溶液,室温下放置1小时,用涂布1cm厚硅藻土的滤纸抽滤,滤液移入1000mL的分液漏斗中。再用50mL丙酮洗涤三角瓶,以此洗涤液洗涤滤纸上的残留物,合并洗涤液于上述分液漏斗中。加入30g氯化钠和100mL正己烷,用振荡器激烈振荡5分钟后,静置。正己烷层移入300mL三角瓶中。水层中加入100mL正己烷,按上述同样操作,正己烷层合并于上述300mL三角瓶中。加入适量无水硫酸钠,不时振荡、混合,放置15分钟后,滤入磨口减压浓缩器中。再用20mL正己烷洗涤三角瓶,以此洗涤液洗涤滤纸上的残渣,重复操作二次,合并两洗涤液于减压浓缩器中,40℃以下除去正己烷。残留物中加入5ml正己烷溶解。
b 净化方法
在内径15mm、长300mm色谱管中注入5g悬浮在正已烷中的柱色谱用合成硅酸镁,其上面再装入约5g无水硫酸钠,放出正己烷至柱上端留有少量的正己烷。柱中注入a 提取方法所得的溶液后,注入100mL正己烷,舍弃流出液。再注入150mL乙酸乙酯:正己烷(1:9)混合溶液, 收集流出液于磨口减压浓缩器中,40℃以下除去乙酸乙酯和正己烷。残留物中加入正己烷溶解,准确至5mL,此为试验溶液。
6.操作方法
a 定性试验
按下列操作条件进行试验,试验结果必须与相同操作条件下标准品的结果一致。
操作条件1
柱:内径0.25mm、长10~30m石英毛细管,涂布0.25μm厚气相色谱用甲基硅酮,老化。
柱温:在50℃保持1分钟,此后每分钟升温25℃。到175℃后,再每分钟升温10℃,到达300℃后,保持5分钟。
进样器温度:230℃
检测器温度:300℃
气体流量:以氦气作载气,调节流速使克菌丹约11分钟流出。
操作条件2
柱:内径0.25mm、长10~30m 石英毛细管,涂布0.25μm厚气相色谱用5%苯基-甲基硅酮,老化。
柱温:在50℃保持1分钟,此后每分钟升温25℃。到125℃后,再每分钟升温10℃,到达300℃后,保持3分钟。
进样器温度:230℃
检测器温度:300℃
气体流量:以氦气作载气,调节流速使克菌丹约11分钟流出。
b 定量试验
根据与a 定性试验同样操作条件所得的试验结果,峰高法或峰面积法定量。
c 确证试验
按照与a 定性试验相同的试验条件,用气相色谱-质谱仪测定,试验结果应与标准品一致。必要时,用峰高法或峰面积法进行定量。
7.定量限
克菌丹:无记载;
乙酯杀螨醇: 0.02 mg/kg
百菌清: 0.01 mg/kg
灭菌丹: 0.01 mg/kg
8.注意事项
只有乙酯杀螨醇作为试验目标时,不必要添加磷酸。
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醚菊酯检测方法
1.分析目标化合物
醚菊酯
2.仪器设备
带紫外分光光度检测器的高效液相色谱仪
3.试剂
使用附录2所列试剂。
4.标准品
醚菊酯:含醚菊酯99%以上,熔点为36℃~38℃。
5.试验溶液的制备
a  提取方法
① 谷类、豆类和种子类
将样品粉碎,通过420μm的标准网筛后,称取其10.0g,加入10mL水,放置2小时。
加入100mL丙酮,搅拌3分钟后,用涂布1cm厚硅藻土的滤纸,抽滤于磨口减压浓缩器中。取出滤纸上的残留物,加入50mL丙酮,搅拌3分钟后,按上述同样操作,合并滤液于减压浓缩器中,40℃以下浓缩至约30mL。
将其移入预先注入100mL 10%氯化钠溶液的300mL分液漏斗中。用100mL正己烷洗涤上述减压浓缩器的茄型瓶,合并洗涤液于分液漏斗中。用振荡器激烈振荡5分钟后,静置,正己烷层移入300mL三角瓶中。水层中加入50mL正己烷,按上述同样操作,合并正己烷层于上述三角瓶中。加入适量无水硫酸钠,不时振荡、混合,放置15分钟后,滤入磨口减压浓缩器中。再用20mL正己烷洗涤三角瓶,以此洗涤液洗涤滤纸上的残留物,重复操作二次,合并两洗涤液于减压浓缩器中,40℃以下除去正己烷。
残留物中加入30mL正己烷,移入100mL分液漏斗。加入30mL正己烷饱和乙腈,用振荡器激烈振荡5分钟后,静置,乙腈层移入磨口减压浓缩器中。正己烷层中加入30mL正己烷饱和乙腈,按上述同样操作二次,合并乙腈层于减压浓缩器中,40℃以下除去乙腈。残留物中加入5mL正己烷溶解。
②水果、蔬菜、末茶和啤酒花
水果和蔬菜:准确称取约1kg样品,必要时定量加入适量的水,搅碎混合均匀后,称取相当于20.0g样品的量。
末茶:称取其5.00g,加入20mL水,放置2小时。
啤酒花:搅碎混合均匀后,称取其5.00g,加入20mL水,放置2小时。
加入100mL丙酮,搅拌3分钟后,用涂布1cm厚硅藻土的滤纸,抽滤于磨口减压浓缩器中。取出滤纸上的残留物,加入50mL丙酮,搅拌3分钟后,按上述同样操作,合并滤液于减压浓缩器中,40℃以下浓缩至约30mL。
将其移入预先注入100mL 10%氯化钠溶液的300mL分液漏斗中。用100mL正己烷洗涤上述减压浓缩器的茄型瓶,合并洗涤液于分液漏斗中。用振荡器激烈振荡5分钟后,静置,正己烷层移入300mL三角瓶中。水层中加入50mL正己烷,按上述同样操作,合并正己烷层于上述三角瓶中。加入适量无水硫酸钠,不时振荡、混合,放置15分钟后,滤入磨口减压浓缩器中。再用20mL正己烷洗涤三角瓶,以此洗涤液洗涤滤纸上的残留物,重复操作二次,合并两洗涤液于减压浓缩器中,40℃以下除去正己烷。残留物中加入5mL正己烷溶解。
③末茶以外的茶
将9.00g样品浸泡在540mL 100℃的水中,室温下放置5分钟后,过滤,移取360mL冷却后的滤液于500mL三角瓶中。
加入100mL丙酮和2mL饱和乙酸铅溶液,室温下放置1小时后,用涂布1cm厚硅藻土的滤纸抽滤,滤液移入1000mL分液漏斗中。再用50mL丙酮洗涤滤纸上的残留物,合并洗涤液于上述分液漏斗中。加入30g氯化钠和100mL正己烷,激烈振荡混合5分钟后,静置,正己烷层移入300mL三角瓶中。水层中加入100mL正己烷,按上述同样操作,合并正己烷层于上述三角瓶中。加入适量无水硫酸钠,不时振荡、混合,放置15分钟后,滤入磨口减压浓缩器中。再用20mL正己烷洗涤三角瓶,以此洗涤液洗涤滤纸上的残留物,重复操作二次,合并两洗涤液于减压浓缩器中,40℃以下除去正己烷。残留物中加入5mL正己烷溶解
b 净化方法
在内径15mm,长300mm的色谱管中注入5g悬浮在正己烷中的柱色谱用合成硅酸镁,其上面再装入约5g无水硫酸钠,放出正己烷至柱上端留有少量正己烷。柱中注入a 提取方法所得的溶液后,注入30mL乙醚:正己烷(2∶98)混合溶液,弃去流出液。再注入50mL乙醚:正己烷(5∶95)混合溶液,收集流出液于磨口减压浓缩器中,40℃以下除去乙醚和正己烷。残留物中加入乙腈溶解,准确至2mL后,用孔径0.5μm滤膜过滤,此为试验溶液 。
6.操作方法
a 定性试验
按下列操作条件进行试验,试验结果必须与标准品的一致。
操作条件
柱填充剂:十八烷基甲硅烷基化硅胶(粒度5μm)。
柱:内径4.6mm,长150mm不锈钢管。
柱温: 25℃
检测器:波长225nm。
流动相:乙腈:水(3:1)混合溶液。调整流速使醚菊酯约10分钟流出。
b 定量试验
根据与a 定性试验相同操作条件所得的试验结果,峰高法或峰面积法定量。
7.定量限
0.02 mg/kg(茶:0.1 mg/kg)
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吡虫清检测方法
1.分析目标化合物
吡虫清
2.仪器设备
带碱热离子检测器或高灵敏氮磷检测器的气相色谱仪气相色谱—质谱仪。
3.试剂
使用附录2所列试剂。
4.标准品
吡虫清:含吡虫清99%以上。
5.试验溶液的制备
a 提取方法
① 水果、蔬菜和末茶
水果、蔬菜:准确称取约1kg样品,必要时定量加入适量的水,搅碎混合均匀后,称取相当于20.0g样品的量。
末茶:称取5.00g样品,加水20mL,放置2小时。
加入100mL丙酮,搅拌3钟后,用涂布1cm 厚硅藻土的滤纸,抽滤至磨口减压浓缩器中。取出滤纸上的残留物,加入50mL丙酮,搅拌3分钟后,按上述同样操作,滤液合并于减压浓缩器中,40℃以下浓缩至约30mL。
将浓缩液转移至预先加入100mL 10%氯化钠溶液的300mL分液漏斗中。用100mL乙酸乙酯洗涤上述减压浓缩器的茄型瓶,合并洗涤液于分液漏斗中。用振荡器激烈振荡5分钟后,静置,乙酸乙酯层移入300mL三角瓶中。水层中加入50mL乙酸乙酯,按上述同样操作,合并乙酸乙酯层于上述三角瓶中。加入适量的无水硫酸钠,不时振摇、混合,放置15分钟后,过滤至磨口减压浓缩器中。再用20mL乙酸乙酯洗涤三角瓶,以此洗涤液洗涤滤纸上的残留物,重复操作2次。合并两次洗涤液于减压浓缩器中,40℃以下除去乙酸乙酯。残留物中加入10mL正己烷溶解,40℃以下除去正己烷。残留物中加入2mL丙酮:正己烷(3:7)混合溶液溶解。
② 末茶以外的茶
将9.00g样品浸泡于540mL 100℃水中,室温下放置5分钟后,过滤,移取360mL冷却的滤液于500mL的三角瓶中。加入2mL饱和乙酸铅溶液,室温下静置1小时后,用涂布1cm 厚硅藻土的滤纸抽滤,滤液移入1,000mL分液漏斗。再用50mL水洗涤上述三角瓶,以此洗涤液洗涤滤纸上的残留物。合并洗涤液于上述分液漏斗中。加入25g氯化钠和100mL乙酸乙酯,用振荡器激烈振荡5分钟后,静置,将乙酸乙酯层移入300mL三角瓶。水层中加入100mL乙酸乙酯,按上述同样操作,合并乙酸乙酯层于上述三角瓶中。加入适量无水硫酸钠,不时振荡、混合,放置15分钟后,过滤至磨口减压浓缩器中。再用20mL乙酸乙酯洗涤三角瓶,以此洗涤液洗涤滤纸上的残留物,重复操作2次。合并2次洗涤液于减压浓缩器中,40℃以下除去乙酸乙酯。残留物中加入10mL正己烷溶解,40℃以下除去正己烷,残留物中加入2mL丙酮:正己烷(3:7)混合溶液溶解。
b 净化方法
在内径15mm,长300mm色谱管中注入5g悬浮在丙酮:正己烷(3:7)混合溶液中的柱色谱用硅酸镁,其上再加入约5g无水硫酸钠,放出丙酮:正己烷(3:7)混合溶液至柱上端余留少量丙酮和正己烷(3:7)混合溶液。将a 提取方法中所得溶液注入柱中后,加入50mL丙酮:正己烷(3:7)混合溶液,舍弃流出液。再加入150mL丙酮:正己烷(1:1)混合溶液,收集流出液于磨口减压浓缩器中,40℃以下除去丙酮和正己烷。残留物中加入丙酮溶解,准确至5mL,此为试验溶液。
6.操作方法
a 定性试验
按照下列操作条件进行试验。试验结果必须与同样操作条件下标准品的结果一致。
操作条件
柱: 内径0.53mm,长30m 石英毛细管,涂有1.5μm厚气相色谱用5%苯基―甲基硅酮,老化。
柱温: 60℃保持2分钟,此后毎分钟升温20℃。到160℃后保持1分钟。再毎分钟升温10℃,到200℃后保持1分钟。再以毎分钟升温3℃,到230℃后保持1分钟,此后毎分钟升温5℃,到260℃后保持15分钟。
进样器温度: 260℃
检测器温度: 260℃
气体流量:用氦气作载气。调整流速使吡虫清约33分钟流出。调整空气和氢气的流量至适当条件。
b 定量试验
根据与a 定性试验相同的操作条件下所得试验结果,峰高法或峰面积法定量。
c 确证试验
在与a 定性试验相同的操作条件下,用气相色谱--质谱仪测定。试验结果必须与标准品的一致。此外,必要时用峰高法或峰面积法进行定量。
戈壁明珠
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新手级: 新兵
抗倒胺检测方法
1.分析目标化合物
抗倒胺
2、仪器设备
带紫外分光光度检测器的高效液相色谱仪液相色谱-质谱仪。
3、试剂
使用附录2所列试剂。
4.标准品
抗倒胺:含抗倒胺 99%以上,熔点为210℃~212℃。
5.试验溶液的制备
a 提取方法
将样品粉碎通过420μm的标准网筛后,称取其20.0g,加40mL水,放置2小时。
加入100 mL丙酮,搅拌3分钟后,用涂布1cm厚硅藻土的滤纸抽滤于磨口减压浓缩器中。取出滤纸上的残留物,加入100mL丙酮:水(7:3)混合溶液,搅拌3分钟后,按上述同样操作,合并滤液于减压浓缩器中,40℃以下浓缩至约70mL,
移入500mL分液漏斗中。
用150mL 2mol/L盐酸洗涤上述减压浓缩器的茄型瓶,合并洗液于上述分液漏斗中。加入100mL正已烷,用振荡器激烈振荡5分钟后,静置,弃去正已烷层。水层中加入50mL正已烷,按上述同样操作,弃去正已烷层。水层中加入5mol/L氢氧化钠,调整PH7。
加入100mL乙酸乙酯:正已烷(1:4)混合溶液,用振荡器激烈振荡5分钟后,静置,乙酸乙酯和正已烷层移入300mL三角瓶中。水层中加入50mL乙酸乙酯:正已烷(1:4)混合溶液,与上述同样操作,合并乙酸乙酯和正已烷层于上述三角瓶中。加入适量无水硫酸钠,不时振摇、混合,放置15分钟后,滤入磨口减压浓缩器中,再用20mL正已烷洗涤三角瓶,用此洗液洗涤滤纸上的残留物,重复操作两次,合并两洗液于减压浓缩器中,40℃以下除去乙酸乙酯和正已烷。残留物中加入5mL丙酮:正已烷(3:17)混合溶液溶解。
b 净化方法
内径15mm、长300mm色谱管中注入5g悬浮在正己烷中柱色谱用合成硅酸镁,其上再装入约5g无水硫酸钠,放出正己烷使柱上端留有少量的正己烷。柱中注入a 提取方法所得的溶液后,注入40mL丙酮:正己烷 (3:17) 混合溶液,舍弃流出液。再注入100mL丙酮:正己烷 (1:4) 混合溶液,收集流出液于磨口减压浓缩器中,40℃以下除去丙酮和正己烷。残留物中加入乙腈溶解,准确至2mL,此为试验溶液。
6、操作方法。
a 定性试验
按下列操作条件进行试验,试验结果应与标准品的一致。
操作条件
柱填充剂:十八烷基甲硅烷基化硅胶(粒径5μm)。
柱:内径4.6mm、长250mm不锈钢管。
柱温:40℃
检测器:波长270nm。
流动相:A:乙腈,B:水;调整流速使抗倒胺约36分钟流出。
浓度梯度:在40分钟内输送液使浓度梯度从A35%到50%。
b 定量试验
根据与a 定性试验相同的操作条件下所得试验结果,峰高法或峰面积法定量。
c 确证试验
按照与a 定性试验相同的操作条件下,用液相色谱-质谱仪测定。试验结果必须与标准品的一致。此外,必要时用峰高法或峰面积法进行定量。
7.定量限
0.005 mg/kg
戈壁明珠
结帖率:
100%
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新手级: 新兵
叶枯肽检测方法
1.分析目标化合物
叶枯肽、叶枯肽酰亚胺
2.仪器设备
带电子俘获检测器的气相色谱仪气相色谱—质谱仪。
3.试剂
使用附录2所列试剂。
4.标准品
叶枯肽:含叶枯肽99%以上,熔点为198℃~199℃。
5.试验溶液的制备
a 提取方法
将样品粉碎,过420μm标准网筛后,称取其10.0g,加入20mL水,放置2小时。
加入100mL丙酮,搅拌3分钟后,用涂有1cm厚硅藻土的滤纸,抽滤于磨口减压浓缩器中。取出滤纸上的残留物,加入50mL丙酮,搅拌3分钟后,按上述同样操作,合并滤液于减压浓缩器中,40℃以下浓缩至约30mL。
将其移入预先加有100mL 10%氯化钠溶液的300mL分液漏斗中。用100mL乙酸乙酯洗涤上述减压浓缩器的茄型瓶,合并洗液于上述分液漏斗中。用振荡器激烈振荡5分钟后,静置,乙酸乙酯层移入300mL三角瓶中。水层中加入50mL乙酸乙酯,按上述同样操作,合并乙酸乙酯层于上述300mL三角瓶中。加入适量的无水硫酸钠,不时振摇、混匀,放置15分钟后,滤入磨口减压浓缩器中,再用20mL乙酸乙酯洗涤三角瓶,以此洗涤液洗涤滤纸上的残留物,重复操作2次,合并两次洗液于减压浓缩器中,40℃以下除去乙酸乙酯。
残留物中加入30mL正己烷溶解,移入100mL分液漏斗中。用30mL正己烷饱和乙腈洗涤上述减压浓缩器的茄型瓶,合并洗液于上述分液漏斗中。用振荡器激烈振荡5分钟后,静置,乙腈层移入200mL分液漏斗中。正己烷层中加入30mL正己烷饱和乙腈,按上述同样操作,合并乙腈层于上述分液漏斗中,重复二次。加入30mL乙腈饱和正己烷,轻摇混匀后,静置,合并乙腈层于磨口减压浓缩器中。40℃以下除去乙腈。残留物中加入1mL乙酸乙酯溶解。
b 酰亚胺化
在a 提取方法所得的溶液中加入1mL无水乙酸,塞紧,50℃水浴上加热20分钟。
加入50mL 10%氯化钠溶液,转移到200mL分液漏斗中。用50mL正己烷洗涤上述减压浓缩器的茄型瓶,合并洗液于上述分液漏斗中。用振荡器激烈振荡5分钟后,静置,正己烷层移入100mL三角瓶中。加入适量无水硫酸钠,不时振摇、混匀,放置15分钟后,滤入磨口减压浓缩器中。再用20mL正己烷洗涤三角瓶,以此洗液洗涤滤纸上的残留物,重复二次。合并两次洗液于减压浓缩器中,40℃以下除去正己烷。残留物中加入2mL正己烷溶解。
c 净化方法
在内径15mm,长300mm的色谱管中注入5g悬浮在正己烷中的柱色谱用合成硅酸镁,其上端再加入约5g无水硫酸钠,放出正己烷至柱上端留有少量正己烷。柱中注入b 酰亚胺化所得的溶液后,注入50mL正己烷,弃去流出液。再注入50m乙酸乙酯:正己烷(1:9)混合溶液,收集流出液于磨口减压浓缩器中,40℃以下除去乙酸乙酯与正己烷。残留物中加入正己烷溶解,准确至5mL,此为试验溶液。
6.操作方法
a 定性试验
按下列操作条件下进行试验,试验结果应与叶枯肽标准溶液按照5.试验溶液的制备中b 酰亚胺化相同操作所得的结果一致。
操作条件:
柱:内径0.25mm,长30m石英毛细管柱,涂布0.25μm厚气相色谱用甲基硅酮,老化。
柱温:在60℃保持2分钟,此后以毎分钟升温20℃。到250℃后保持34分钟。
进样器温度:250℃。
进样方式:不分流。
检测器温度:300℃。
气体流量:用氦气作载气。流速调整到使叶枯肽酰亚胺约35~37分钟流出,调节辅助气氮气的流量至适当条件。
b 定量试验
根据与a 定性试验相同操作条件所得的试验结果,峰高法或峰面积法定量。
c 确证试验
按照与a 定性试验同的操作条件,用气相色谱—质谱仪测定。试验结果应与标准品按照5.试验溶液的制备中b 酰亚胺化相同操作所得的结果一致。此外,必要时用峰高法或峰面积法进行定量。
7.定量限
0.01 mg/kg
8.注意事项
1)分析值
叶枯肽的分析值包括叶枯肽和叶枯肽酰亚胺。
2)带电子俘获检测器的气相色谱仪测定叶枯肽酰亚胺时,因玻璃衬垫的吸附使灵敏度易变化,有必要通过试验溶液和标准溶液的交叉注入,定量确证其重现性。
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