主题:【分享】欧盟兽药检测方法(之二十五)

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牛尿中己烯雌酚残留物的测定——放射免疫法(EEC,筛选法)

METHOD FOR THE DETECTION OF RESIDUES OF DIETHYLSTILBOESTROL IN BOVINE URINE USING RADIOIMMUMOASSAY(RIA)(EEC,Sg1.3 Screening Method)
1、引言
欧盟一直禁止在食物性动物中使用1,2-二苯乙烯类药物。
2、主题内容及应用范围
本分析方法描述了牛尿中己烯雌酚(DES)的测定。其检测限为己烯雌酚
0.23μg/L尿,其定义为空白测定标准差的三倍。按20个样品空白检测标准差的六倍计,其检测限为0.38μg/L。
3、参考资料
ISO Standard 78/2-1982 layout for standards-Part 2:Standard for Chemical Analysis

Commission Decision, 93/256/EEC, laying down the methods for detecting residues of substances having a hormonal or thyrostatic action. (OJ. No.L.118, 14.4.93. PP 64-74)

Standard Operating Procedure for the estimation of diethylstilboestrol in urine from the Central Meat Control Laboratory, Dublin, Ireland.

Other references.
Bates, M.L., Warwick, M.J. and Shearer, G. (1985), Determination of synthetic growth promoters in bile. Food Additives & Contaminants. 2, 37-46

Gaspar, P. And Maghuin-Rogister, G.(1985),Rapid extraction and purification of diethylstilboestrol in bovine urine hydrolysates using reversed phase C 18 columns before determination by radioimmunoassay. J.Chromat. 328, 413-416

Harwood, D.J., Heitzman, R.J. And Jouquey, A., (1980), A radioimmunoassay method for the measurement of residues of the anabolic agent hexoestrol residues in faeces, tissues and body fluids of bulls and steers. Vet. Rec. 112, 120-123

Jansen, E.H.J.M.,(1985),A highly specific detection method for diethylstiboestrol in bovine urine by radioimmunoassay following high performance Liquid chromatography. Food Additives & Contaminants. 2, 271-281

Vogt, von K.,(1985), Vereinfachte Absicherung des radioimmunologischen Nachweises von Diethylstilbestrol in Fleischhaltigen Konserven und tierischen Ausscheidungen. Arch. Fur Lebensm. Hygiene. 36, 1-24
4、定义
己烯雌酚量为:根据所叙述方法测定,不管其化学形态,所测得样品中己烯雌酚的含量,以μg/L表示。
5、方法提要
本法包括5个步骤:
——在缓冲液中稀释尿液
——缓冲液均质液用酶进行共轭水解
——用乙醚萃取己烯雌酚
——最后用放射免疫分析法测定
——通过标准曲线内插法和引入回收率来计算己烯雌酚量
6、 萃取动物组织试剂
注: 已知所引用例证的试剂的来源是满意的,尽管如此,其它来源的试剂同样适合。
6.1 化学试剂
6.1.1 丙酮
6.1.2 干冰
6.1.3 乙醚(无过氧化物且高纯度)
6.1.4 无水磷酸二氢钠
6.1.5 无水磷酸氢二钠
6.1.6 氯化钠
6.1.7 硫柳汞(thiomersal)
6.1.8 明胶
6.1.9 甲醇
6.1.10 净化水一经逆渗透,后经去离子吸收和过滤
6.1.11 氚标记己烯雌酚,-20℃保存(91Ci/mmol, 1mCi/mL)
6.1.12活性炭()
6.1.13 葡萄糖(Pharmacia T70)
6.1.14 闪烁液(Optiphase Hisafe 11-LKB)
6.1.15 己烯雌酚的抗体,-20℃贮存(Marloie,比利时),交叉反应:与反式己烯雌酚为100%,与反式己烯雌酚 dipropionate为97%,己烷雌酚3.3%,双烯雌酚1%,其它1,2-二苯乙烯类<0.4%,其它合成性激素类固醇<0.1%。
6.1.15 氮
6.2 标准品
6.2.1 己烯雌酚()
6.3 溶液
6.3.1贮备液:( 100ng/mL)溶解100mg己烯雌酚于甲醇中,定容100mL,用甲醇配成浓度为100ng/mL,-20℃保存。
6.3.2 工作液:用甲醇稀释贮备液制成不同浓度己烯雌酚标准工作液。分别为:5,10,20,50,100,200和500 pg/mL,4℃保存。
6.3.3磷酸盐—明胶缓冲液—4.68无水磷酸二氢钠(Analar BDH),8.66g无水磷酸氢二钠(Analar BDH),9.0G NaCl(Analar BDH),0.1g 硫柳汞( BDH),1.0g明胶(BDH)用纯净水定容至1L,于4℃保存。
6.3.4 β—葡萄糖醛酸酶(如),用10倍体积的重蒸馏水溶解。
6.3.5 活性炭悬浮液—5g活性炭(6.1.12)0.5g,葡聚糖(6.1.13)用磷酸盐缓冲液(6.3.3)定容至1L。
6.3.6 氚标记己烯雌酚:用10mL甲醇稀释50μL 贮备液(6.1.11),其放射性浓度约2μCi/mL,-20℃保存。
6.3.7氚标记己烯雌酚分析液:将6.3.6贮备液蒸发,并重新溶解于缓冲液中,制成10,000CPm/0.1mL。当日配制使用。
注:必须测定氚标记己烯雌酚的非特异性结合,且如果它超过总计数的10%,氚标记己烯雌酚应予再提纯或替换。
6.3.8 用缓冲液6.3.3制备抗体溶液。必须按制备抗体的有关说明要求制备抗体,缓冲液中抗体浓度应比最终RIA分析保温混合液所需要的浓度高8倍多。
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7、设备
涉及公司和/或产品仅供参考,同类型的其它产品也适用。
7.1 液闪计数器:带自动换样器
7.2 闪烁瓶
7.3 冷藏间
7.4 冷冻/致冷室
7.5 –20℃深度冷冻装置
7.6 通风橱
7.7 离心机
7.8 低温离心机,可用于大量小试管
7.9 台式离心机
7.10加热设备
7.11 37℃水浴/恒温箱
7.12 40°/45°水浴箱
7.13 电磁搅拌器
7.14 玻璃器皿
7.15玻璃试管75mm×12mm
7.16 带塞的玻璃试管125mm×16mm
7.17 多用玻璃瓶,约25mL,带塑料螺帽
7.18 旋涡混匀器
7.19 吸管和自动加液器
7.20带有一次性吸液尖的半自动微量吸管
7.21 巴斯德吸管
7.22 量杯(tilt measures)(5mL,乙醚用)
7.23 自动加液器:用于液闪剂。
7.24 用于溶液蒸发的适当设备,如压缩氮气源和蒸发管或旋转蒸发器。
注:在使用氮气流或旋转蒸发器皿时,应在不超过50℃下蒸发溶剂。
8、样品和抽样程序
本节注意事项是依据6.3.1和ISO文件(78/2-1998〕起草的。下列注意事项源于2052/V1/84-EN的附录II。
8.1样品的性状:样品应达到64/433/EEC指令规定的肉中残留检测有关要求。
8.2样品量:样品必须足以满足进行本方法测定,并足以进行所需要的重复分析。
8.3 抽取和包装方法必须适合在实验室予以鉴别。
8.4 包装、保存和传递方式必须保证样品的完整性,且不得影响实检结果。分析己烯雌酚的样品必须-18℃以下贮存和传递。
9、步骤
9.1.1 各加O.5mL空白尿液到4个试管(7.16)或多用瓶中(7.17)。
9.1.2 各加0.5mL空白尿液和100pg 己烯雌酚至4个试管(7.16)或多用瓶(7.17)中做回收率。
9.1.3 各加0.5mL空白尿液和90pg 己烯雌酚于4个试管(7.16)或多用瓶(7.17)中作质量控制(QC)检查。
9.1.4 加0.2mL尿样到试管或多用瓶中(做双试验),通常仪器可应用30份样品。
9.2加50μL酶(6.3.4)于9.1.1—9.1.4各试管/通用瓶中,37℃保温2小时。
9.3 令其冷却,加5mL乙醚(6.1.3),旋涡混匀15秒。
9.4 在200rpm下离心5min。
9.5 于干冰/丙酮浴中冷冻样品,将乙醚相倾入玻璃试管(7.15)。
9.6 在氮气流下蒸发至干(7.24)。
9.7 放射免疫分析
本方法用活性炭将结合的抗体和游离的配体分离。
9.7.1 分别吸取0.1mL甲醇到7个RIA试管中(7.15),(其中3管用于非特异性结合(N.S.B.),4个试管作为0标准管)。将含有5-500pg的己烯雌酚标准溶液(6.3.2)各取0.1mL,加入R1A试管中。(一式三份)在氮气流下蒸发至干(7.24)。
9.7.2.1 加60μL甲醇至所有试管中。(9.7.1 9.6)加640μL明胶—磷酸盐缓冲液(6.3.4)至3个非特异结合试管中,及540μL缓冲液至其余试管中。
9.7.2.2 加0.1mL3H—己烯雌酚(6.3.7)于所有试管中和2个闪烁瓶中(用于总计数)。
9.7.2.3 除3个用于做非特异结合的0标准管外,所有试管中均加入0.1mL抗体(6.3.8),3个NSB管加0.1mL缓冲液(6.3.4)。
9.7.3 旋涡混匀几秒
9.7.4 置全部试管37℃水浴15min,而后4℃保温过夜
9.7.5. 4℃下加0.5mL活性炭悬浮液(6.3.5)
9.7.6 用手轻轻振摇全部试管约1min,4℃下静置10min
9.7.7 4℃下,于2000—3000 rpm离心20min
9.7.8 将上清液倾入闪烁瓶中(7.2)
9.7.9 所有瓶中均加入10mL闪烁剂(6.5.2),其中2个瓶装有0.1mL氚标记己烯雌酚溶液(9.7.2.2)和2个瓶装有0.1mL明胶—磷酸盐缓冲液(背景计数)。
9.7.10 将样品置于液闪计数器(7.1)并计数(预置时间和计数),如10000次计数或10min。
10、结果计算
10.1 将含有0-500pg标准各瓶中与抗体结合的氚标记己烯雌酚的cpm,对应标准pg数作图,制定标准曲线。
10.2 根据测试样品和空白试剂的cpm,从校正曲线上读出己烯雌酚的pg值。
10.4 样品中己烯雌酚浓度的计算
己烯雌酚pg=(标准曲线pg值-空白pg值)×5×回收率校正系数
标准曲线pg值=由10.2步得到的pg值
空白pg值=由10.2步得到溶剂空白pg值
回收率校正系数由含100pg试管(9.1.2)的回收率测得。
10.5 替代的计算
B=结合抗体的cpm-非特异性结合(NSB管9.7.2.3)cpm
B=0标准管中结合抗体的cpm-非特异性结合的cpm
B0应在总计数(cpm3H-DES(SA))的40-60%之间
将B/Bo对应标准pg值作图绘制标准曲线。
如果计算机程序系统可能的话,那么,最好以标准的对数值,对应LnZ/(1-Z)作图,其中Z=B/Bo(LOGIT图)能用于插入结果。应用cpm-NSB计算试样和溶剂空白的B/Bo值,从校正曲线上算出己烯雌酚 pg值。按10.3 进行处理。
最后结果中应包括原始计数数据。
10.6添加空白尿液的回收率和精密度数据
浓度(ng/mL) 回收率(%) 实验室内相对标准偏差(CV%)
0.5 85 15
5 90 12
10 92 8
数据来源于肉类控制实验室Dublin,1reland
11、特殊情况 略
12、操作注意事项
——如果RIA试管未经硅烷化处理则可得到更好的结果
——在RIA试管中加入甲醇有助于己烯雌酚重新构成溶液
13、抗体
己烯雌酚抗体可以通过商业渠道购得,但建议从共同体基准实验室获得最新的有关信息。
14、质量控制 略
参看手册中第8节以获得己烯雌酚RMS细节
15、缩写表
NSB:非特异性结合率;SA,标准附加;完整的缩写表在附录中I12节给出。
16、检验流程图
尿→水解

计算结果←RIA←乙醚提取

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