主题:【求助】关于HPLC测定多糖分子量的问题

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hnkjzyj
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我提取出来的多糖,经DEAE-52离子交换柱分离得到三个不同组分,但是经HPLC---TSK G-4000PWxl洗脱却得到一个很均一的峰...想了解下为什么会这样?看峰形很对称、狭窄(比我用的标准糖的峰宽要窄),说明多糖分子量很均一么?
洗脱条件:0.3ml/min,超纯水超纯水洗脱,TSK G-4000PWxl柱子,ELSD(蒸发光散射检测器)


补充:楼下有板油提到说是GPC的峰形是这种图形有问题,馒头形的会好一些....但是..我走的标准品差不多也是这个形状的,我把标准品的图形也给放上,大家给参考下..标准品用的是Sigma的Dextran标准品,分子量是1000Da...
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老多_小多
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蒸发光散射检测器不能说明多糖分子量的均一问题吧?
〓猪哥哥〓
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hnkjzyj
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原文由 老多_小多(emoc98311) 发表:
蒸发光散射检测器不能说明多糖分子量的均一问题吧?


不能说明么??
我是这么理解的:首先,TSK G-4000PWxl是凝胶柱,是根据分子量来进行分离的,文献里对多糖分子量进行鉴定一般都是用的这个柱子(好像这根是专门的糖柱)..既然是根据分子量分离的,由于糖没有特征吸收峰,无法用PDA检测器检测,一般都是用示差检测器来检测的,我只不过是用ELSD检测器替代了示差检测器,应该能说明问题吧??
hnkjzyj
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原文由 〓猪哥哥〓(03yx2) 发表:
是不是其他两成分还没有洗脱出来


应该出来了吧,因为我是连续使用机器的,也就是每个样走60min,然后冲洗10分钟后继续走下一个样....图形还是这样的....
存在的问题就是:之前我用Sephadex G-100对多糖进行过分离,显示是一个大峰,收集之后用DEAE-52洗脱,先用线性洗脱摸索最佳条件,然后确定采用梯度洗脱,洗脱出来的是三个峰...每个峰分别收集的话,透析冻干,然后再分别走Sepharose CL-6B层析柱,每个峰的出峰时间不一样,说明应该是三个不同分子量的组分....
也就是,直接进行分子渗透色谱分离的话就是一个峰,用离子交换能够给分离出三个不同的峰,而且每个峰的分子量还不同....
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2010/4/12 17:58:03 Last edit by hnkjzyj
awen0926
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能告诉我你的色谱条件吗?是用酸性流动相的吗?流速0.3是不大的,那压力有多大?
hnkjzyj
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原文由 awen0926(awen0926) 发表:
能告诉我你的色谱条件吗?是用酸性流动相的吗?流速0.3是不大的,那压力有多大?


流动相是用的超纯水,流速0.3ml/min,压力应该是在1.4MPa左右(这个记不清楚了)
蒸发光检测器温度是80℃,载气是用的氮气发生器自制的氮气.....
awen0926
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多糖成分只用纯水,用TSK G-4000PWxl柱子分离的话,就算是单组份应该也没有这样好才对啊,如果你用3个组分的标准品也不能分别在不同时间出峰的话,那么说明你的色谱条件有问题哦,个人以为做多糖用凝胶柱还是用酸性的缓冲液做流动相,调节PH到4.0左右,应该能提高分离的效率。
柏坡
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就算分子量不均一也可能得出这样的色谱峰,多糖凝胶渗透色谱的分离模式决定了它能分离高分子,具有相同化学性质的同系物。可能这3中物质性能比较接近。
tigertooth
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如果用别的柱子确实分出3个组分,而TSK的柱子只有一个峰,那么你的分离条件就可能有问题:柱子没分开,原因有多种,比如流动相条件不对,柱子选的不对,柱子和样品有相互作用、吸附等。而且看你的峰,峰型明显不对,GPC的峰肯定不会象普通HPLC峰那么窄,那么尖,就算分散度为1的标样,也不应想你的样品峰这样,最起码分子量低的没分好。看你样品的出峰时间,在根据溶剂峰的出峰时间,按道理讲,柱子的分离效果不应该很差,但后面的峰出的如此之快就不对。
所以分离条件肯定有问题,在如此差的分离下,怎么判断分子量很均一?
hnkjzyj
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原文由 awen0926(awen0926) 发表:
多糖成分只用纯水,用TSK G-4000PWxl柱子分离的话,就算是单组份应该也没有这样好才对啊,如果你用3个组分的标准品也不能分别在不同时间出峰的话,那么说明你的色谱条件有问题哦,个人以为做多糖用凝胶柱还是用酸性的缓冲液做流动相,调节PH到4.0左右,应该能提高分离的效率。


文献里一般都是用缓冲溶液来洗脱的,用的是示差检测器
因为我们实验室没有示差检测器,而ELSD里不能有盐分的出现啊,所以,限于实验室条件就选用超纯水洗脱了....
是不是多糖与TSK填料发生了什么特异性吸附,有些组分没有洗脱出来?或者就一直在柱子里吸附??
如果用酸性缓冲液的话,用什么好?是洗脱液的pH影响大还是离子强度影响大?
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