主题:【已应助】有没有人用液质测多肽的,测量多肽样品稀释度多少,加酸多少?

浏览0 回复13 电梯直达
thluo
结帖率:
100%
关注:0 |粉丝:0
新手级: 新兵
我正在做杆菌肽,流动想用10mM甲酸胺(pH=6.0)和甲醇/乙腈,样品配成10mg/mL,进样2uL,调节MS参数, 用Q1可以看到很大的分子离子峰和大约1/3强度的带2个电荷的峰/
steven_sela
结帖率:
100%
关注:0 |粉丝:0
新手级: 新兵
我现在一般都从0.25%FA-水开始试,有机相不加甲酸,调有机相和水相的比例。效果还算不错。
happy_horse1126
结帖率:
100%
关注:0 |粉丝:0
新手级: 新兵
原文由 chenrain(chenrain) 发表:
我不太明白哦,如果是质谱,lz的这个样品浓度已经完全可以了啊。
lz想问的是做液质的浓度么?
我前几天刚好也是用液质分离了一个多肽样品,浓度大概是0.1mg/ml,上样10ul,在色谱上的响应值不是很高,几十mAU。
联用的流动相一开始用的0.1%TFA,对质谱信号抑制很严重。
后来改用0.025%,信号还行,不过正在考虑是不是换用其它有机酸。


液质最好不要用TFA,残留太严重。液相用TFA是改善峰型的,液质一般用甲酸和乙酸。0.05%或者0.1%足够了。
猜你喜欢最新推荐热门推荐更多推荐
品牌合作伙伴