主题:【分享】ELISA试剂盒实验之如何选择最优化的包被条件

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ELISA试剂盒实验看似操作简单、便捷,但是每一步科研人员都需要投入百分之百的心血和精力。今天要为您讲解的是ELISA试剂盒实验之如何选择最优化的包被条件。
1.包被抗原的选择
包被抗原可分为天然蛋白、重组蛋白和小分子抗原三大类。天然蛋白需经纯化才能用直接吸附法包被,对于含杂质较多的抗原可以采 用间接捕获法包被(先用能够与目的抗原反应的物质如抗体直接吸附在酶标板上,再通过特异性反应使抗原固相化)。经纯化的重组蛋白一般皆可直接包板。小分子 抗原比如多肽以及一些小分子有机化合物,由于分子量太小,往往难于直接吸附在酶标板上,一般都先使其与无关蛋白质如BSA等偶联,偶联物吸附于固相载体上。 
2.包被液的选择
一般常用的是pH9.6的碳酸盐缓冲液,如果包被的抗原在碱性条件下不稳定的话,也可以使用pH7.2的磷酸 盐缓冲液。
3.包被温度的选择
通常是4-8度条件下过夜或者37度保温2小时,我们强烈建议4-8度条件下包被,有利于蛋白活性的保持。 
4.包被浓度的选择
包被的最适浓度随固相载体和包被物的性质变化,一般蛋白质的包被浓度为1-5ug/ml,要明确针对特定包 被抗原的最适包被浓度需要通过实验来确定。 
包板后需要封闭吗?应该选择什么样的封闭体系? 
封闭是否必要,取决于ELISA的模式 及具体的实验条件。一般说来,双抗体夹心法,只要酶标记物是高活性的,操作时洗涤彻底,不经封闭也可得到满意的结果。而在间接法测定中,封闭一般是必不可少的。
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不接触的版友对一些名词不太理解。
大概解释下:
1、免疫原:这个很好理解,就是免疫动物用的蛋白,即目标蛋白。
2、筛选原:免疫动物后,用来筛选抗体用的,一般和免疫原是有点区别的,比如是免疫原上的一个肽段,或其他批次的相同抗原。
3、包被原:就是包被用的蛋白。
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原文由 平凡人(zhaoyt1979) 发表:
不接触的版友对一些名词不太理解。
大概解释下:
1、免疫原:这个很好理解,就是免疫动物用的蛋白,即目标蛋白。
2、筛选原:免疫动物后,用来筛选抗体用的,一般和免疫原是有点区别的,比如是免疫原上的一个肽段,或其他批次的相同抗原。

3、包被原:就是包被用的蛋白。


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