主题:【资料】欧盟兽药检测方法(之十一)

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放射免疫法测定肉、牛奶和蛋中的氯霉素残留量(EEC, 筛选法)

RIA Screening Method for the Detecion of Chloramphenicol in Meat, Milk and Eggs (EEC, Sg3.3 Screening Method)

安全操作注意事项及急救
实验中使用有机溶剂时按潜在危险品处理规定操作,并在通风橱内进行。
引言
氯霉素(CAP)是具有广谱性作用的抗生素,作为兽药用于家畜疾病的预防和治疗。欧盟(EEC)在CVMP决议中规定不允许在蛋鸡和乳牛中使用。
1 主题内容
欧盟(EEC)对氯霉素制定了全面限制使用的规定。为了确保农场主在蛋鸡和乳牛中不再使用氯霉素,同时为了对动物源肉品中氯霉素的监控,因此从饲养场和屠宰场抽取的样品进行 筛选检测的目的,制定了本法。一旦筛选呈阳性,必须进一步检验确证。
2 应用范围
本法用于肉、牛奶和蛋中氯霉素残留量的鉴定。方法检测限:牛奶和蛋,1 g/L或1 g/kg;肉10 g/kg.
3 参考文献
Commission Decision 93/256/EEC,laying down the method for detecting residues of substances having a hormonal or thyrostatic action [OJ.NO.L.118,14.4.93 PP 64-74]
ISO Standard 78/2-1982 layout for standards Part 2:Standard for chemical Analysis ISO Standard 5725(1986)
Radioimmunoassay for the measurement of chloramphenicol residues in eggs, milk and meat.(1993)
Bundesgesundheitsampt, Berlin
Arnold, And, lst Draft of the summary report of EEC Collaborative study “chloramphenical Methods ”,July 1987-February 1988.
Arnold D, Vom Berg D, Boertz, A. K, Mallik, U. and Somogyi, A.(1984), Radioimmunologische Bestimmung Von Chloramphenicol-Ruckstanden in Musculatur, Milch und Eiern, Archiv, Fur Lebensmittel Hygiene, 35, 121-148
Prei B. A, Balizs, G07 Bensch-Girke Th, Gude, A, Boenke, A. and Kroker, R, (1993)Preparation of reference materials for chloramphenicol in muscle and milk-date on puality criteria,In Proc.Euroresidues ⅡConference, Veldhoven NL. Vol. 2.558-562
4 定义
氯霉素含量是指按本法测得的肉、蛋和牛奶中氯霉素的量,以 g/L或 g/kg表示。
5 方法提要
本方法包括三个步骤
──样品用乙酸乙酯提取;
──提取物用液-液分配法净化(对于牛奶样品用固相(SPE)净化法)
──用放射免疫法(RIA)进行检测和宣量。
6 材料
6.1 试剂
注意:所有试剂均为分析纯
6.1.1 乙酸乙酯
6.1.2 甲醇
6.1.3 三氯甲烷
6.1.4 正已烷
6.1.5 乙腈
6.1.6 异辛烷
6.1.7 氯化钠
6.1.8 乙醇 (绝对保证分析纯)
6.1.9 绵羊白蛋白()
6.1.10 磷酸氢二钾
6.1.11 磷酸氢二钠
6.1.12 叠氮化钠
6.1.13 活性炭 Norit A pract
6.1.14 葡聚糖,分子质量大约70000道尔顿(Pharmacia 1702800)
6.1.15 水相液配制的闪烁液(Beckmann 270453721A)
6.1.16 氯霉素()
[注意:放射性标记的氯霉素(CAP)(6.1.17)和抗血清(6.1.18)可从BGA(Berlin)购得。
6.1.17 放射性标记的丙酰氯霉素,3-羟基-3-(4 -硝苯基)-2-(N /3H/丙酰基)-氨基丙烷1-醇,放射量,61 Ci/mmol (2.26TBq/mmol),TRQ5394,(由BGA特约合成)。所提供的产品为在乙醇中为14.47 ci/mL。贮存于-20℃下。
6.1.18 氯霉素单抗血清(BGA)
61.19 蒸馏水
6.1.20 冰
6.2 氯霉素标准品
6.2.1 标准溶液;氯霉素标样配于乙醇中,浓度10ug/ml贮于4℃,至少可稳定6个月。
6.2.2标准工作溶液用磷酸缓冲液(6.3.1)稀释,得到浓度为10, 25, 50, 100, 125, 250, 500, 1250, 2500ng/mL。改溶液限制一周内使用.
[注意:方法性能考察采用20个校正点]
6.3 溶液
6.3.1 磷酸盐缓冲溶液,PH7.45。3.4g KH2PO4, 3.55g Na2HPO4和0.5g叠氮化钠溶于950毫升水中。调节pH至7.45,再用水定容至1升.
6.3.2 抗血清预稀释液1/200 (W/W) ;含2.5 mg/mL羊单抗血清(6.1.18)的磷酸缓冲液,贮存于-20℃。
如果抗血清为冷冻干燥形式(BGA提供)则按如下操作:
──将管子离心,以免损失
──加1mL水
──在4℃下振荡过夜使其重组。
6.3.3 抗血清工作液 1/75000 (w/w);取部分抗血清预稀释液(6.3.2),稀释375倍,贮于+4℃。
6.3.4 放射配体工作液,取部分放射性标记的同素物(6.1.17)用磷酸盐缓冲液稀释,得到1.08纳摩尔浓度的溶液,当用配制贮存于4℃,限制一周内使用。
6.3.5 活性碳悬浮液:将3g活性炭,0.5克葡聚糖和0.25克羊单抗血清溶解于1升pH7.45磷酸盐缓冲液(6.3.1)中,混匀.
6.3.5 乙腈/4%氯化钠(1/1, v/v);由等体积的乙腈与4%氯化钠溶液配制。
7. 仪器设备
7.1 加液器; 0-20 L, 0-1000 L, 0-5000 L
7.2 具塞离心管:10-12mL l,15-20mL,(Schmidt, Germany )
7.3 微量试管 (Eppendort 3812)
7.4 其螺旋盖样品瓶 10-20mL (Beckmann)
7.5 容量瓶 10mL和100mL
7.6 自动加液器,(“Dispensette”,Brand Germany )
7.8 快速真空装置 (savant ,VSA)
7.9 管子搅拌器 型号HEIDOLPH “TOP-mix”
7.10 旋转搅拌器 具有旋转板,型号HEIDOLPH“Reax 2”
7.11 涡旋混合器
7.12 通风橱
7.13 真空离心机( UneEquip,Germany)
7.14 液体闪烁计数器(Beckmann)
7.15 冷冻箱,大约-18℃至-20℃
7.16 冷藏室/冷冻室
7.17 巴氏移液管
7.18 试管 75mm×12mm
7.19 分析天平
7.20 冷冻离心机 (sorvall, USA)
7.21 台式离心机
7.22 C18小柱 (sep-par, C18, Waters-Millipore, Cat No 519)
8. 样本和取样过程
注释:注意事项在ISO文件7812-1982和6.3.1节有所描述。下面注释源于2052/VI/84-EN中的附录Ⅱ.
8.1 样品本性状:牛奶、肉和蛋样品,应是被用来进性行残留物检测的样品。
8.2 样品量:样品量应能满足方法的测定以及重复测定时所需的量。
8.3 取样后的样品必须冷冻,贮存于-20℃以下。
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9. 检测步骤
9.1 检测样品的制备。
9.1.1 肉:取在0-4℃新鲜的肌肉组织样品并剁碎,对于冻肉,解冻后剁碎,混匀。样品待测前应在0-4℃中保存,并在48小时内分析。如要贮存较长时间,则应在-20℃以下冷冻或最好在-80℃冷冻,保证其稳定。
9.1.2 蛋:均质
9.1.3 牛奶:原料奶或任何经均质但未变性的经加温的牛奶。
9.2 肉和蛋的预提取处理
9.2.1 将3g粉碎肉或均质蛋置于离心管中
9.2.2 蛋样:滴加5ml惭腈,搅拌。 肉样:加8ml的乙腈/4%氯化钠的溶液(6.3.6) 。
9.2.3 充分混合成均质。
9.2.4 4000g离心10min
9.2.5 称取并转移至样品瓶中。
9.2.6 移取约1/6 (w/w)上清液至具盖的玻璃离心管中
9.2.7 加5m正已烷和2ml水并充分混和.
9.2.8 1700g离心5min
9.2.9 弃去上层
9.2.10 重复9.27至9.29步骤
9.2.11 加3.5ml经乙酸乙酯饱和并混匀的水
9.2.12 1700g离心5min
9.2.13 分取有机相,并将其蒸发至干。
9.3 牛奶的提取
9.3.1 取1mL牛奶于玻璃试管中,加入0.75mL三氯甲烷/异辛烷(3/2, v/v) 混匀.
9.3.2 4000g离心15min
9.3.3 取0.7mL上清液于C18小柱上。小柱预先按下列顺序进行处理:
5mL甲醇;5mL氯仿;5mL甲醇和10mL蒸馏水淋洗。
9.3.4 样品经10mL蒸馏水(9.1.19)淋洗
9.3.5 加5mL乙腈/水(1/1, v/v)洗脱.
9.3.6 加5mL水(经乙酸乙酯饱和)抽提洗脱液中的氯霉素, 1700g离心
9.3.7 移取上层液,用真空浓缩器浓缩至干
9.3.8 加0.7mL磷酸盐缓冲液(6.3.1)溶解残余物,按9.5.2步骤操作
9.4 (原文无)
9.5 放射免疫分析
[注意:所有操作步骤必须在0℃的冰浴中进行]
9.5.1 用450mL磷酸盐缓冲液(6.3.1)溶解肉/蛋提取液(9.2.13)。肉的提取液用缓冲液稀释约10倍,使氯霉素于缓冲液的浓度大约为150pg/200mL。
9.5.2 将下面溶液合并于玻璃试管中:
──200 L提取液(9.5.1或9.3.8)或标准溶液(6.2.2)
──200 L放射配体工作液(6.3.4)
──400 L抗血清工作液(6.3.3)
在最后加入抗血清后开始恒温。
[注意:每个样品平行测定两次]
9.5.3 在+4℃中恒温过夜
9.5.4 在每个管内加入1mL经充分搅和的活性炭悬浮液必需在5分钟内完成。
9.5.5 在0℃中孵育30分钟
9.5.6 1700g 离心10min
9.5.7 将上清液移入至足够量的液闪液中.
9.5.8 在闪烁仪中,计数10分钟或计数误差在2%之内.
10.0 结果计算
10.1 要求校正曲线计算结果时采用非线性程序是适宜的。
[注意:在RIA中,进校正氯霉素标样浓度和结合量/总量(B/T)之间分别为非线性最小二次方曲线拟合中的自变量和因变量.若B/T值经对数转换后,通常只有校正曲线的中心部分呈线性。]
对于样品中氯霉素含量的计算,需要下列数据:
A 每个试管中氯霉素量(两次平均值),这些值是从校正曲线中测得的。
F 校正因子,移入RIA管中的检测样品钻的比值。
EA 从原提取样液中取出用于净化部分的样液重量。
EW 原提取液重量。
SW 样品重量。
蛋样品
F=22.5,对于分析含量中10ppb时
EA=约为EW的六分之一,采用精确数值
EW=一般为5-6.5克,采用精确数值
SW=约为3克,采用精确数值
肉样品
F=22.5,对于分析其含量浓度为10ppb时
EA=约为EW的1/6,采用精确数值
EW=一般为7.5-9克,采用精确数值
SW=约为3克,采用精确数值
F=5,对于分析其中含量浓度为1ppb时
EA=约为1,对于分析含量在1ppb时
EW=约为1,对于分析含量在1ppb时
SW=约为1,对于分析含量在1ppb时。
结果计算式为:
A F EW
F = = ----------------------
1000 EA SW
10.2 精密度
在EEC用肉和牛奶做协同试验,测定结果如下:
肉 牛奶
实际含量( g/kg) 11.6 1.0
测得平均值( g/kg) 6.9 1.1
重复性(ng/g) 3.2 0.72
CV%(变异系数) 16 23
重现性(ng/g) 7.0 1.1
变异系数cv% 36 36
实验室间cv% 32 28
注1:这个数值未考虑回收率的校正。
本数据的分析按照ISO标准5725/1986进行。
10.3 质量控制
对下列每个分析对象必须重复检验两次包括:试剂空白,动物组织空白样品,用作添加的动物组织样,可能的话还有参考物质(标样)。
应测定移入每个分析试管的总放射量。
应测定非特异性结合放射配体的量,其值不能超过8%,

11 - 12 略
13. 样品质量控制
肌肉,牛奶和蛋的基准物质由BGA制备并按DG12测定和试验程序进行,最终相互比较和认证。
14 - 15 略
16. 检验流程图
肉/蛋----------------------------→溶剂提取

牛奶---→溶剂提取---→C18 SPE小柱--→RIA----→测定结果

yuduoling
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不错的资料,要是作为附件放在一个贴子里供下载就更好了.多谢分享
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