主题:【分享】欧盟兽药检测方法(之十三)

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高效薄层层析法(HPTLC)测定动物及动物组织中甲状腺抑制物质的残留量
(EEC 筛选法)

Thyreostats-Method for the Measurement of Residues of Thyreostatic Substances in Animals and Animal Tissues on the Basis of High Performance Thin Layer Chromatography (HPTLC)
(EEC Sg 1.4 Screening Method)

1. 引言
欧共体国家禁止在食用性动物中使用甲状腺抑制药物,共同体国家规定进口或共同体国家内所生产的动物性食品中的甲状腺抑制药物最大残留限量(MRL)为0。

2.应用范围
该分析方法描述了食品和动物源的样品中甲状腺抑制物质的定性实验。该方法适用于肉类,也适用于如动物器官、及其生物流体及排泄物样品的测定。对硫脲嘧啶(2-TU)、甲基硫氧嘧啶(MTU)、丙硫氧嘧啶(PTU)的检测限是25μg/kg(L),苯硫氧嘧啶(PhTU)、甲巯咪唑(TAP)经汞化柱后回收率降低,故这两种化合物的检测限是100μg/kg(L)。
刮下HPTLC板上的待测物斑点,衍生化后通过GC-MS(CI MODE)进行鉴别和确证甲状腺抑制物质(De Brabander et al ,1992)。参见方法Cy1.9。

3. 参考资料
93/256/EEC 委员会决议 ,规定了使用激素或甲状腺抑制物的物质中残留物的测定方法。(OJ. NO.L.118,14.4.93,PP64-74)
ISO标准78/2-1982标准物质的列出---第二部分:化学分析的标准物质
EEC工作文件VI/3186/84-EN,文件6.21 II-4 使用选择性汞化柱检测新鲜肉组织中甲状腺抑制物的分析方法
De Brabander, H.F. and Verbeke, R.(1984), 甲状腺抑制剂的测定Proc. 30th Eur. Meat Res. Workers , Bristol , 387-388.
De Brabander, H.F., Batjoens, P. and Van Hoof, J.(1992), 甲状腺抑制剂高效薄层层析法的测定和GC-MS的验证 J. Planar Chrom . 5, 124-130

4. 定义
本测定方法中检测的甲状腺抑制物质分别为:
硫脲嘧啶(2-TU)、甲基硫氧嘧啶(MTU)、丙硫氧嘧啶(PTU)、苯硫氧嘧啶(PhTU)、甲巯咪唑(TAP)

5. 方法提要
本方法由4个步骤组成:
---动物组织样品匀质或用甲醇稀释动物流体样品
---样品上清液通过汞化的离子交换树脂色谱柱进行层析
---衍生化
---双向HPTLC分离和鉴别
注:参见验证方法Cy1.9

6. 化学试剂
注:所有试剂均为AR级。
6.1 甲醇
6.2 无水乙醇
6.3 盐酸,用发烟盐酸(min 37%)加水稀释
6.4 氢氧化钾
6.5 乙醚(不含过氧化物,具有极高纯度)
6.6 无水硫酸钠
6.7 树脂洗脱液:0.5M NaCl,0.1M HCl,pH=1
6.8 NBD-Cl 溶液:5mgNBD- Cl(7-氯-4-硝苯-2-氧-1 3-二唑)溶于1mL甲醇中,需当日配制并保存在低温黑暗处
6.9 氢氧化钠
6.10 氯化钠
6.11 显色剂
6.11.1 溶剂1:50mL变性酒精(工业酒精)与50mL异丙醇混合,加2mL25%的氨水。
6.11.2 溶剂2:0.6g半胱胺盐酸盐(或2-半胱胺)溶于20mL水中,4℃冰箱保存,当日配制。
6.11.3 显色试剂:使用前将2mL溶剂2和100mL溶剂1迅速混匀
6.12 标准品
6.12.1 甲状腺抑制剂标准溶液的配制:标准贮存液的配制为分别称取20mg 硫脲嘧啶(2-TU)、甲基硫氧嘧啶(MTU)、丙硫氧嘧啶(PTU)、苯硫氧嘧啶(PhTU)、甲巯咪唑(TAP)甲状腺抑制剂溶于100mL甲醇中。对甲基硫氧嘧啶(MTU),需加蒸馏水和微量盐酸来溶解。丙硫氧嘧啶(PTU)溶于苯和甲醇的混合液中(8:92,V/V)。标准工作液的配置是取适量上述贮存液用缓冲液(6.12.4)将其稀释100倍而配成。
6.12.2 内标物为双甲基硫氧嘧啶(DMTU)。20mgDMTU溶于100mL甲醇中制成贮存液,使用前用甲醇迅速稀释0.5mL贮存液至100mL而配成工作液。
6.12.3 添加试验样品:称取用于添加试验的2.0g搅碎肉样(或其他动物组织)中加入含0.05μg TU,MTU,PTU,0.2μg TAP及作为内标的DMTU0.2μg的甲醇溶液100μL。
6.12.4 磷酸缓冲液:取94.5mL0.2M Na2HPO4与5.5mL0.2M KH2PO4混合,pH调整至8.8。

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7. 设备
7.1 气密和水密性反应管,10mL和20mL
7.2 匀浆机(Ultra-Turrax型号)
7.3 磨口抽提管,50mL
7.4 +4℃冰箱
7.5 -20℃低温冰箱
7.6 离心机
7.7 TLC辅助设备,如溶剂罐
7.8 紫外灯(UV),366nm,带参比滤光片或保护性的色谱镜

7.9 玻璃柱,长约300mm,内径4mm,外径6mm
7.10 200mL的玻璃烧瓶(带B14玻璃接头)
7.11 平口针尖的微量注射器(1μL,10μL,100μL)
7.12 汞化树脂的制备
20mL Dowex1χ2(50-100目,分析级)连续用10倍于填充物体积的蒸馏水、0.5M NaOH、蒸馏水、0.5M乙酸、蒸馏水冲洗。将湿树脂(20mL)与200mL2,7-二溴-4-羟基汞基荧光素水溶液(500mg溶于200mL水中)混合震荡24小时。汞化的树脂再用水洗至洗脱液无色。再用100mL 0.1M HCL、0.5M NaCL处理、500mL蒸馏水水洗、100mL 0.1M NaOH处理、500mL蒸馏水水洗,树脂保存于暗处。
7.13 净化过程所用层析小柱的制备
见图 (1)玻璃柱,内径4mm,外径6mm
(2)玻棒,内径3mm
(3)与硅胶管连接
(4)硅胶管,内径0.3mm,外径0.7mm
(5)硅胶管,内径0.5mm,外径1mm
(6)硅胶管,内径0.5mm,外径4mm
(7)玻璃漏斗
R-----树脂
柱充满水后移去玻棒,约含0.6mL的汞化树脂水悬浮液通过漏斗加入至树脂沉淀高为5cm,移去多余的树脂并加玻棒于树脂之上。柱备用。
7.14 HPTLC
7.14.1 薄层板:涂有硅胶60的铝板,无荧光显示剂(如Merck No. 5613或5547)。薄层板使用前110℃活化并放置过夜。
7.14.2 溶剂: 可选用系统A或系统B。
系统A:
7.14.2.1A 第一次展开剂:三氯甲烷:乙醇 95:5(V/V)
7.14.2.2A 第二次展开剂:三氯甲烷:丙酸 95:5(V/V)
系统B:
7.14.2.1B 第一次展开剂:二氯甲烷:甲醇 98:2(V/V)
7.14.2.2A 第二次展开剂:二氯甲烷:丙酸 98:2(V/V)
7.14.3 显色剂: 参见6.11
上列试剂生产公司及产品仅供参考,相当试剂同样合适。

8. 样品及取样程序
8.1 样品属性:样品应符合64/433/EEC指令中,关于进行肉样中进行兽药残留检测的要求。如果没有此类肉样,也可用动物的体液或排泄物作为样品来进行残留检测。
8.2 样品量:其数量必须满足本实验要求,必要时须满足复验所需的量。
8.3 样品的传递与包装须满足实验室的能正确识别的要求。
8.4 包装、保存、运输的方法必须保持样品的完整性并不致产生检验结果的偏差。分析甲状腺抑制物的样品的保存与运输须在-18℃以下。

9. 测定步骤
9.1 取动物组织2g,2mL尿,血浆或脱脂奶,加入10mL甲醇后用一Ultra-Turrax匀浆机(7.2)匀质。
9.2 加入含0.2μg内标DMTU的溶液100μL(6.12.2),匀浆液用10,000rpm(12,000g)离心10分钟。
9.3 倾出上清液,过汞化柱(7.13)。小心上下移动玻棒赶去气泡。

9.4 10mL水洗柱后,甲状腺抑制物随5mL洗脱液(6.7)洗出。
9.5 100μL 4M NaOH和1mL缓冲液(6.12.4)中和洗脱液,并调PH=8。
9.6 加入0.1mL试剂(6.8),40℃黑暗处反应1小时。最佳反应时间依赖于NBD-Cl的性能,在1-2小时间变化。须预先确定最佳反应时间。
9.7 滴加0.2mL 6M HCl调整反应混和物的pH为3-4。
9.8 先后用3mL、2mL、2mL乙醚抽提NBD衍生物,无水硫酸钠(0.5-1g)干燥抽提混和物。不得有水。
9.9 根据检测的浓度需要,用氮气流吹去乙醚,使混和物体积在0.2-1mL。
9.10 混合0.1mL的标准品储备液于5mL缓冲液(6.12.4)中预备衍生化。依照9.6—9.9的步骤衍生化,蒸发乙醚至体积为2mL。
9.11 用50-100μL提取物(9.9)进行双向HPTLC展开。
9.12 薄层板先在第一展开剂(7.14.2.1A/B)中层析,小心吹干后再在第二展开剂(7.14.2.2A/B)中层析。
9.13 标准品在与样品同时衍生化后,可与样品抽提物平行进行第二次展开,以便准确的判别各个甲状腺抑制药物。
9.14 用半胱胺酸的显色剂对展开后的薄层板进行喷雾显色来判别斑点。在未喷显色影剂前斑点无法看见,显色后样品在兰色背景下呈黄色荧光点。在366nm下以可疑的甲状腺抑制物和内标物的相对荧光强度进行比较来检测。
注:薄层板放置过夜将可减少检测干扰物质。

10. 结果计算
10.1 鉴别
阳性样品斑点呈黄色、荧光状,应与标准品有相同的Rf值。使用7.14.2.1A和7.14.2.2A展开剂,与内标DMTU的相对Rf值应与表1中的数值相当。
表1. HPTLC法甲状腺抑制物与DMTU的RRf
甲状腺抑制物 第一次展开后的RRf 在第二次展开后的RRf
DMTU 1.0 1.0
TU 0.34 0.22
MTU 0.59 0.43
PTU 0.73 0.77
PhTU 0.94 0.89
TAP 1.09 0.53
数据来自EEC工作文件VI/3186/84-EN,文件6.21 II-4
10.1. 回收率
经汞化柱后甲状腺抑制物TU、MTU、PTU、DMTU的回收率>78%,而PhTU为17%,TAP 60%。
添加至肉、血浆、奶中的内标物、DMTU的回收率见表2
表2. 100μg/kg DMTU添加回收率
样品 检测的结果±SD(μg/kg)
PTU MTU TU
肉 106±5.5 102±13.7 97±21.8
血浆 84±6.2 98±5.0 76±5.7
奶 88±6.9 105±3.6 85±8.0
10.2 准确度
10.2.1 重现性:按添加浓度100μg/kg加入至肉样品中,对方法的每一测定步骤进行精密度实验,其重现性测定结果见表3,数据由De Brabander、Verbeke、GhenT提供。
步骤 N 回收率
平均值±SD(μg/kg) 变异系数(%)
柱层析 26 81±3.9 4.8
衍生化 26 76±5.0 6.6
HPTLC 22 88±4.7 5.4
总过程 22 55±6.9 12.6

11-15. 略
见附录I,第12部分。

16. 检验流程图
动物组织 加入甲醇与内标物 匀质 汞化柱渗滤

衍生化 HPTLC 366nm荧光检测

结果计算

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