主题：【求助】－请教做农残的高手

提取
称取样品10g，加入100ml烧杯中，再加入50ml丙酮，在振荡器上震荡30分钟。减压抽滤，滤液转入250ml分液漏斗中，将所得残渣（包括滤纸）重新转入原来的100ml烧杯中，再加入50ml丙酮 ，在振荡器上震荡30分钟。二次减压抽滤，合并2次所得的滤液，移入分液漏斗中，加入饱和氯化钠溶液30ml，摇匀后加入2MHCl 2 ml，然后用40 ml CH2Cl2萃取脱色，弃去CH2Cl2相，水相用2ml/L的NaOH调PH至7.6-7.8,再用CH2Cl2 萃取3 次（30、20、20 ml）。
净化
在层析柱内，依次加入少许助滤剂，1g硅胶，2g无水硫酸钠，先用5ml的CH2Cl2洗柱子，再分次加入萃取液，最后用5ml CH2Cl2洗萃取液，所得滤液在30℃下减压蒸干，用甲醇定容至10ml,供液谱测定。
样品的测定
高效液相色谱条件
色谱柱：C18 柱，250mm×4.6mm; 柱温室温；
流动相：甲醇：醋酸氨：氨水（V/V）=65：30：5;
流速：1 ml/min;
检测波长：283nm;
进样量：20 μl;

国标上有，你自己可以去查查看！

SN 0220-1993  出口水果中多菌灵残留量检验方法 
GB/T 5009.188-2003  蔬菜、水果中甲基托布津、多菌灵的测定
SN/T 1753-2006  进出口浓缩果汁中噻菌灵、多菌灵残留量检测方法 高效液相色谱法
NY/T 1453-2007  蔬菜及水果中多菌灵等16种农药残留测定液相色谱-质谱-质谱联用法

QuEChERS法提取,LCMSMS检测,检出限在0.01ug/kg以下

好像多菌灵和甲基硫菌灵可以相互转化，所以要两种农药一齐测才比较准确。

还有一种 反相离子对LC法。乙腈高速分散提取，硫酸镁脱水盐析，经凝结沉淀净化，LC.

出口水果中多菌灵残留量检验方法
1 主题内容与适用范围
  本标准规定了出口水果中多菌灵残留量检验的抽样、制样和液相色谱测定方法。
本标准适用于出口柑桔中多菌灵残留量的检验。

  2 抽样和制样

  2.1 检验批
以不超过1 500件为一检验批。
  同一检验批的商品应具有相同的特征,如包装、标记、产地、规格和等级等。
    2.2 抽样数量
    批量,件      最低抽样数,件
1～25            1
26～100          5
101～250          10
251～1 500        15
2.3 抽样方法
                     
按2.2规定的抽样件数随机抽取,逐件开启。每件至少取500g作为原始样品,原始样品总量不得少于2kg。加封后,标明标记,及时送实验室。
2.4 试样制备
将所取原始样品缩分出1kg,取可食部分,经组织捣碎机捣碎,均分成两份,装入洁净容器内,作为试样。密封,并标明标记。
2.5 试样保存
  将试样于－18℃以下冷冻保存。
  注：在抽样和制样的操作过程中,必须防止样品受到污染或发生残留物含量的变化。
  3 测定方法
  3.1 方法提要
  试样用盐酸溶液加热回流,进行提取。提取液经过滤后调至碱性,再用二氯甲烷提取。
  提取液经浓缩,C18预处理小柱净化,甲醇洗脱。洗脱液浓缩后用液相色谱仪－紫外检测器测定,外标法定量。
  3.2 试剂和材料
      所用试剂除注明外,均为分析纯,水为蒸馏水。
3.2.1 正己烷：优级纯。
3.2.2 二氯甲烷。
3.2.3 甲醇：色谱纯。
  3.2.4 甲醇溶液：20%(V/V)水溶液。
3.2.5 盐酸溶液：2mol/L。
3.2.6 氢氧化钠溶液：10mol/L,2mol/L。
3.2.7 碳酸氢钠溶液：用水溶解5g碳酸氢钠并稀释至100mL。
3.2.8 多菌灵标准品：纯度≥96%。
3.2.9
多菌灵标准溶液：准确称取适量的多菌灵标准品,先用少量的盐酸溶液(3.2.5)微热溶解,再用该盐酸溶液定容,配成浓度为1.00mg/mL的标准储备溶液。根据需要再配成适当浓度的标准工作溶液。
  3.3 仪器和设备
  3.3.1 液相色谱仪并配有紫外检测器。
  3.3.2 离心管：具塞,5mL,15mL,50mL。
  3.3.3 离心机：转速6 000r/min。
    3.3.4 快速混匀器。
  3.3.5 高速组织捣碎机。
  3.3.6 多功能微量化学样品处理仪（或相当的装置）。
    3.3.7 微量注射器：25μL、100μL。
    3.3.8 玻璃抽滤器。
    3.3.9 砂芯漏斗：2号或3号。
      3.3.10 C18预处理小柱：先用3mL甲醇,再用同体积水分别淋洗。
      3.3.11 注射器：5mL。
3.4 测定步骤
3.4.1 提取、净化
                     
称取试样约5g(精确到0.1g)于50mL离心管(3.3.2)内,加10mL盐酸溶液(3.2.5),装上回流冷凝管后,加热至沸腾,回流30min。移出,冷却至室温。将离心管内的样液用砂芯漏斗抽滤,再用10mL盐酸溶液(3.2.5)分数次洗涤残渣。合并滤液,在容量瓶中用盐酸溶液(3.2.5)定容至25mL。
                     
准确吸取2.5mL上述滤液,同时吸取与样液中多菌灵浓度相近的标准工作溶液2.5mL,分别置于15mL离心管中,加4mL二氯甲烷,在快速混匀器上混匀2min,离心(4000r/min)3min。用尖嘴吸管吸出下层二氯甲烷,弃去。在水相中加入适量氢氧化钠溶液(10mol/L),使试液接近碱性,然后小心滴加氢氧化钠溶液(2mol/L),使试液的pH为10～11。再滴加碳酸氢钠溶液,使试液的pH调至9.5～10。用3×4 mL二氯甲烷在快速混匀器中提取2min,离心(4 000r/min)3min,用尖嘴吸管将二氯甲烷转入另一离心管中。合并三次二氯甲烷提取液,浓缩至1mL。
  将上述浓缩的提取液通过注射器转入C18预处理小柱(3.3.10)。用3mL甲醇溶液(3.2.4)洗涤离心管并过C18预处理小柱,弃去流出液。继用3mL正己烷洗涤离心管并过C18预处理小柱,弃去流出液。用2×2.5mL甲醇(3.2.3)洗涤离心管并过C18预处理小柱,收集二次洗脱液并浓缩至1mL以下。用甲醇(3.2.3)定容至1mL,供液相色谱测定。
3.4.2 测定
3.4.2.1 色谱条件
  a. 色谱柱：μBondapak C18,300mm×29mm(id)；
    b. 流动相：甲醇－水(4＋6)；
  c. 流速：0.8mL/min；
  d. 检测器：紫外检测器,测定波长286nm；
e. 色谱柱温度：室温。
3.4.2.2 色谱测定
根据样液中多菌灵含量情况,选定与样液峰高相近的标准工作溶液。标准工作溶液和样液中多菌灵响应值均在仪器检测线性范围内。对标准工作溶液和样液等体积参插进样测定。在上述色谱条件下,多菌灵保留时间约为7min。
  3.4.3 空白试验
    除不加试样外,按上述测定步骤进行。
  3.5 结果计算和表述
  用色谱数据处理机或按下式计算试样中多菌灵残留含量：
        h•cs
    X=───-
        hs•c
  式中：X—试样中多菌灵残留量,mg/kg;
    h—样液中多菌灵的峰高,mm；
    hs—标准工作溶液中多菌灵的峰高,mm；
    cs—标准工作溶液中多菌灵的浓度,μg/mL；
    c—最终样液所代表的试样浓度,g/mL。
  注：计算结果需扣除空白值。
  4 测定低限、回收率
  4.1 测定低限
  本方法的测定低限为0.7mg/kg。
    4.2 回收率
  回收率的实验数据：多菌灵添加浓度在0.7～12.0mg/kg范围内,回收率为90.9%～102.2%