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液相色谱检测牛奶中的尿素的操作要点
一、样品前处理
取适量牛奶样品,一般为 5 至 10 毫升,置于离心管中。
加入一定量的沉淀剂,如乙腈、甲醇等,目的是去除牛奶中的蛋白质等干扰物质。例如,可以加入与牛奶等体积的乙腈,充分振荡混合后,静置一段时间,使蛋白质沉淀。
对混合液进行离心处理,通常以较高转速(如 8000 转 / 分钟以上)离心数分钟,使沉淀与上清液分离。
取上清液,通过过滤膜(如 0.22 微米的滤膜)进行过滤,去除可能残留的微小颗粒,得到待测样品溶液。
二、色谱条件设置
色谱柱选择:
选用适合分离极性物质的反相色谱柱,如 C18 柱。可以根据实际情况选择不同长度和内径的色谱柱,以满足分离要求和仪器兼容性。
考虑柱子的粒径,较小粒径的色谱柱通常具有更高的分离效率,但也可能带来较高的柱压。
流动相:
常用的流动相组合为甲醇 - 水或乙腈 - 水体系。可以通过调整两者的比例来优化分离效果。
为了改善峰形和分离度,可以在流动相中添加适量的缓冲盐,如磷酸盐缓冲液等。但要注意缓冲盐的浓度不宜过高,以免对色谱柱和仪器造成损害。
流动相在使用前需进行脱气处理,以防止气泡进入色谱系统影响检测结果。可以采用超声脱气或在线脱气等方法。
流速:
一般设置在 0.8 至 1.2 毫升 / 分钟之间。流速的选择要综合考虑色谱柱的规格、分离效果和分析时间等因素。
柱温:
通常设定在 30 至 40℃之间。适当的柱温可以提高分离效率,减少峰展宽,同时也有助于保持流动相的稳定性。
检测波长:
尿素在特定波长下有较强的吸收,一般选择在 195 至 205 纳米左右的波长进行检测。
三、仪器操作
开启
液相色谱仪,按照仪器操作规程进行预热和稳定。
设置好色谱条件后,进行空白运行,确保系统无杂质干扰。
注入标准品溶液,建立标准曲线。可以使用不同浓度的尿素标准溶液进行多次进样,绘制浓度与峰面积的标准曲线。
注入待测样品溶液,记录色谱图。根据保留时间确定尿素的出峰位置,并通过与标准曲线对比计算出样品中尿素的含量。
四、结果分析与质量控制
对检测结果进行分析,判断样品中尿素的含量是否符合相关标准。
进行质量控制,包括定期校准仪器、检查色谱柱性能、进行空白试验和加标回收试验等。
空白试验:检测不含尿素的空白样品,确保系统无背景干扰。
加标回收试验:在已知不含尿素的牛奶样品中加入一定量的尿素标准品,按照样品前处理和检测步骤进行操作,计算回收率。回收率应在合理范围内,一般要求在 80% 至 120% 之间,以验证检测方法的准确性和可靠性。