主题:【分享】单细胞凝胶电泳步骤

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单细胞凝胶电泳步骤:
1. 分离制备单细胞悬液:
(1) 体外培养的细胞株:用胰酶消化,最后用PBS悬浮吹打成单细胞悬液,细胞要计数,具体的量我前边已经说过。
(2) 体内脏器细胞:处死动物,取出脏器,于Hanks’液中制备成单个细胞悬液。
2. 胶板制备:
(1) 取100μl于45℃水浴中保温的0.5%NMA,铺于磨沙载玻片上,形成底胶。盖玻片推匀,不能有气泡,4度凝固5至8分钟。
(2) 水平取下盖片,取100μl于37℃水浴中保温的0.5%LMA与20μl细胞悬液(约400个细胞)混匀,立即铺片,加上盖玻片,4度凝固5至8分钟。
3. 细胞裂解与电泳:
(1) 将制备好的胶板去掉盖玻片后,浸于4℃预冷的细胞裂解液中,在4℃下裂解2.5到3小时。
(2) 取出胶板,用双蒸水浸没漂洗后放入电泳槽中,浸泡在4℃预冷的电泳液中解旋20分钟。
(3) 玻片水平放置阳极端附近,4℃电泳20到25分钟(25V,300mA)。可在电泳槽周围加冰块以保持低温。
4. 中和与染色:
(1) 电泳结束,将胶板浸泡于中和液中,每次10分钟,共中和3次,每次要更换中和液。最后晾干。
(2) 取出胶板,置于染色缸中,在2μg/ml的EB染色液中,暗处染色5到10分钟。
(3) 蒸馏水漂洗2次,每次5分钟。
稍晾干,滤纸吸去多余水分,尽快在荧光显微镜下观察。
从胶板制备开始到最后都应该在暗光下操作。
先讲这些,你们可以先开始摸索,真正做了才能发现具体的问题,到时我们再探讨。
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